一、棗組培快繁技術(shù)及正交設(shè)計(jì)應(yīng)用試驗(yàn)（論文文獻(xiàn)綜述）
徐慧[1]（2021）在《金絲楸嫩枝扦插及組培快繁技術(shù)研究》文中提出金絲楸（Catalpa Bungei var.Jinsi）是楸樹的一個變種,由于其干型通直、生長快、木材材質(zhì)優(yōu)良并具特殊的金色紋理,近年來在山東、安徽、河南等省得到廣泛的推廣。由于金絲楸自花不育的特性,無性繁殖一直作為金絲楸主要的繁殖方法,金絲楸屬于難生根樹種,目前扦插生根效果較差,嫁接繁殖受砧木及嫁接技術(shù)影響培育的苗木質(zhì)量不均,因此,開展金絲楸扦插繁殖和組培快繁研究對金絲楸推廣應(yīng)用具有重要現(xiàn)實(shí)意義。本試驗(yàn)以金絲楸嫁接苗的當(dāng)年生嫩枝為材料進(jìn)行扦插試驗(yàn),同時探討了金絲楸嫩枝扦插生根過程中生根關(guān)聯(lián)酶、內(nèi)源激素、營養(yǎng)物質(zhì)等內(nèi)含物的變化規(guī)律,并開展了金絲楸組培快繁技術(shù)研究,得到了各個階段的最優(yōu)培養(yǎng)基,建立金絲楸組培快繁體系,以期為進(jìn)一步改善扦插繁殖效果和金絲楸苗木工廠化生產(chǎn)提供理論和技術(shù)支撐。研究結(jié)果如下:1.嫩枝扦插（1）使用椰糠+泥炭土+珍珠巖（配比1:1:1）混合基質(zhì)做扦插基質(zhì),NAA+IBA（配比1:1）濃度1200 mg·L-1同時加入600mg·L-1的PVPP進(jìn)行1min速蘸,生根率達(dá)到74.7%,平均生根數(shù)量6.5條,平均根系長度3.3cm,為本試驗(yàn)的最佳扦插處理;（2）生根率與IAAO活性顯著負(fù)相關(guān),與PPO活性、POD活性存在一定的相關(guān)性,激素處理通過激活POD活性,以及在根原基誘導(dǎo)期激活PPO活性同時降低IAAO活性對生根產(chǎn)生有利影響;（3）在根原基誘導(dǎo)、不定根表達(dá)期激素處理通過提高可溶性糖的含量,促進(jìn)插穗生根;生根率與可溶性蛋白含量顯著負(fù)相關(guān),激素處理可以加快蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)錄翻譯的進(jìn)程且在不定根表達(dá)期加快蛋白質(zhì)的利用消耗為生根提供更為高效的能量供應(yīng);（4）生根率與IAA含量、ZR含量顯著正相關(guān),與ABA含量負(fù)相關(guān),激素處理通過提高內(nèi)源IAA和ZR含量、降低ABA含量對生根產(chǎn)生積極的促進(jìn)作用。2.組培快繁（1）金絲楸外植體消毒滅菌最佳處理為75%酒精消毒30s+0.1%升汞消毒6min,外植體污染率19.5%,誘導(dǎo)率89.73%;（2）初代培養(yǎng)最佳培養(yǎng)基為:WPM+6-BA 0.8 mg·L-1+IBA 0.05 mg·L-1,誘導(dǎo)率91%,平均側(cè)芽數(shù)量2.6個;（3）繼代培養(yǎng)最佳培養(yǎng)基為:改良MS+6-BA 1.0 mg·L-1+IBA 0.5 mg·L-1;（4）試管內(nèi)生根最佳培養(yǎng)基為WPM+IBA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1,生根率93%,平均生根數(shù)量6.2條,平均根系長度3.4cm;試管外生根的最佳處理為混合生長素IBA:NAA=2:1,濃度300 mg·L-1或600 mg·L-1下速蘸20s,生根率可達(dá)90%,且側(cè)根發(fā)達(dá);（5）金絲楸組培苗最佳移栽基質(zhì)為椰糠:珍珠巖=1:1或泥炭:椰糠:珍珠巖=1:1:1,平均移栽成活率87.43%。
曾文丹,曹升,尚小紅,陸柳英,肖亮,嚴(yán)華兵[2]（2021）在《野生黃精離體快繁技術(shù)體系的優(yōu)化》文中研究說明以野生黃精不定芽為材料,以MS為基本培養(yǎng)基,添加不同濃度的植物生長調(diào)節(jié)劑6-BA、2,4-D、NAA、KT進(jìn)行3因素4水平的正交設(shè)計(jì)試驗(yàn),篩選黃精增殖的最佳培養(yǎng)條件;探討不同培養(yǎng)溫度對黃精組培苗繼代增殖的影響;以1/2 MS為基本培養(yǎng)基,探討不同生長素及其濃度和不同培養(yǎng)容器對組培苗生根的影響。結(jié)果表明,黃精組培苗最佳繼代增殖培養(yǎng)基為MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L 2,4-D+0.4 mg/L NAA,最佳培養(yǎng)溫度為22℃,平均繁殖系數(shù)達(dá)6.88;最佳生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.5 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA,平均生根率達(dá)96.2%;接種袋是黃精工廠化育苗的首選生根培養(yǎng)容器。
任重[3]（2020）在《黑果枸杞遺傳多樣性及快繁體系的初步研究》文中研究指明黑果枸杞（Lycium ruthenicum Murr.）為茄科（Solanaceae）枸杞屬多年生落葉灌木植物,主要分布在我國西北部地區(qū)。果實(shí)富含豐富的花青素、多糖、礦物質(zhì)等營養(yǎng)物質(zhì),被稱之為天然的抗氧化劑。黑果枸杞不僅具有藥用價(jià)值和保健價(jià)值,作為西北地區(qū)荒漠化治理的先鋒樹種,還具有巨大的生態(tài)價(jià)值。近年來,由于黑果枸杞生長環(huán)境的惡化,加之種子在自然條件下萌芽率低、人們的破壞性采摘等原因,導(dǎo)致黑果枸杞的資源在很大程度上受到了破壞。目前,黑果枸杞已開始人工栽培,但在良種選育和繁殖、定向培育技術(shù)等方面的研究尚需進(jìn)一步加強(qiáng)。本研究利用SSR分子標(biāo)記技術(shù)研究了我國西北地區(qū)黑果枸杞種質(zhì)資源的遺傳多樣性及居群間的遺傳分化,并建立了黑果枸杞離體快繁體系,為我國黑果枸杞資源的保護(hù)、利用以及新品種的選育和繁殖提供了理論依據(jù)和技術(shù)支撐。主要研究結(jié)果如下:1.利用轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)開發(fā)并篩選出多態(tài)性好、條帶清晰的20對SSR引物用于黑果枸杞種質(zhì)資源的遺傳多樣性及親緣關(guān)系分析,并對SSR-PCR擴(kuò)增體系進(jìn)行了優(yōu)化。2.所有引物在黑果枸杞的樣品中均能有效擴(kuò)增,可以用于黑果枸杞的遺傳多樣性研究。其中,基于SSR標(biāo)記黑果枸杞居群的主要遺傳多樣性指數(shù)分別為:等位基因平均為1.66,有效等位基因數(shù)平均為1.36,Nei’s遺傳多樣性指數(shù)平均為0.21,Shannon指數(shù)平均為0.31,觀察雜合度（Ho）的平均值為0.30,期望雜合度（He）平均為0.23。通過軟件計(jì)算得到的遺傳多樣性指數(shù)說明本研究中采集到的黑果枸杞種質(zhì)資源的遺傳多樣性相對較低。3.AMOVA分析結(jié)果表明,黑果枸杞的遺傳變異主要來源于居群內(nèi)部,居群間存在中度遺傳分化,居群間基因流（Nm）為0.5026,說明黑果枸杞居群間有一定的基因交流。4.Mantel檢驗(yàn)黑果枸杞各群體的地理距離和遺傳距離矩陣的關(guān)系,結(jié)果顯示出較低的相關(guān)性（r2=0.037,P=0.250）,這表明不同群體之間的遺傳特征沒有明顯受到地理距離隔離的影響。經(jīng)BOTTLENECK軟件分析的Wilcoxon符號秩檢驗(yàn)結(jié)果顯示,黑果枸杞3個群集在遺傳瓶頸的兩種模型IAM和TPM下均有顯著的過度雜合（P<0.01）和顯著的遺傳瓶頸效應(yīng)（P<0.01）,這表明黑果枸杞群體的遺傳分布很有可能受到遺傳瓶頸效應(yīng)的影響。5.黑果枸杞快繁技術(shù)體系為:以無菌苗為培養(yǎng)材料誘導(dǎo)愈傷組織的最佳培養(yǎng)基配方為MS+6-BA（1.0mg/L）+NAA（0.5mg/L）,愈傷組織生長情況最佳,出愈率達(dá)95%;誘導(dǎo)不定芽的最佳培養(yǎng)基配方為MS+6-BA（0.2mg/L）,不定芽的增殖系數(shù)為5.6,以培養(yǎng)基MS+6-BA（0.2mg/L）+NAA（0.05mg/L）的配方誘導(dǎo)不定芽增殖成叢生芽效果最好;誘導(dǎo)生根的最佳培養(yǎng)基配方為1/2 MS+IBA（0.2mg/L）,生根率為80%。
趙培霞[4]（2020）在《兩種具有園林用途的野生植物組織培養(yǎng)與再生體系研究》文中研究說明甘蒙錦雞兒（Caragana opulens Kom.）和蒙古蕕（Caryopteris mongholica Bunge）是我國西北地區(qū)優(yōu)良的野生鄉(xiāng)土植物。本文旨在利用無性繁殖技術(shù)解決兩種植物在有性繁殖方面的困境,填補(bǔ)兩種植物在組織培養(yǎng)方面的空白,并為其他鄉(xiāng)土野生耐旱性植物的無性繁殖提供一定的理論基礎(chǔ),在一定程度上可以保護(hù)野生鄉(xiāng)土植物多樣性,實(shí)現(xiàn)園林綠化引種。本文以甘蒙錦雞兒成熟種子和蒙古蕕幼嫩莖段為外植體,利用組織培養(yǎng)方法,建立了兩種野生鄉(xiāng)土植物的組培體系,并運(yùn)用統(tǒng)計(jì)分析方法對試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。研究結(jié)果如下:（1）消毒處理:甘蒙錦雞兒外植體最佳處理方式為:75%的酒精消毒30 s加2%的次氯酸鈉消毒15 min,成活率為61.09%;蒙古蕕外植體最佳處理方式為:流水下沖洗30min,75%的酒精消毒30 s加2%的次氯酸鈉消毒3 min,成活率為99%。（2）甘蒙錦雞兒種子誘導(dǎo)叢生芽途徑中:初代誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)基都以MS+6-BA 0.50 mg/L+NAA 0.05 mg/L培養(yǎng)基最佳,誘導(dǎo)率為78.84%,增殖率為3.30;6-BA和NAA對誘導(dǎo)和增殖都有顯著性影響,并確定因素最優(yōu)水平。以1/2MS+IAA0.10mg/L生根最佳,生根率為63.16%。（3）甘蒙錦雞兒種子誘導(dǎo)愈傷途徑中:誘導(dǎo)、增殖培養(yǎng)基都以MS+6-BA0.5 mg/L+2,4-D 0.50 mg/L培養(yǎng)基最佳,誘導(dǎo)率為75%,增殖系數(shù)為3.00;分化以MS+6-BA0.50 mg/L+NAA 0.50 mg/L+KT 2.00 mg/L培養(yǎng)基最佳,5 d出現(xiàn)綠芽點(diǎn),但沒有分化出叢生芽。（4）蒙古蕕幼嫩莖段誘導(dǎo)叢生芽途徑中:初代、增殖培養(yǎng)基都以MS+6-BA 1.00 mg/L+NAA 0.30 mg/L+GA 0.02 mg/L培養(yǎng)基最佳,誘導(dǎo)率為99%,增殖系數(shù)約為12.00;6-BA、NAA和GA都對增殖有顯著性影響,并確定最優(yōu)水平。以MS+IBA 0.30 mg/L+GA0.15 mg/L生根最佳,生根率為89.50%;IBA、NAA對生根率都有顯著性影響,并確定最優(yōu)水平。（5）煉苗:將甘蒙錦雞兒和蒙古蕕組培苗移植在泥炭土:珍珠巖:蛭石=6:3:1基質(zhì)上,成活率分別為90%和77%。
夏春英[5]（2019）在《竹葉蘭繁育系統(tǒng)與快繁技術(shù)及其多倍體誘導(dǎo)研究》文中研究表明竹葉蘭（Arundina graminifolia）是蘭科（Orchidaceae）竹葉蘭屬多年生草本植物,具有較高的藥用和觀賞價(jià)值。近年來,由于受生境破壞和人為采挖等因素影響,野生竹葉蘭資源被破壞得極為嚴(yán)重,種群數(shù)量日益減少,現(xiàn)已被列入國家II級保護(hù)植物,目前,對于竹葉蘭的保育相關(guān)研究仍較少,因此,本研究通過開展其花部結(jié)構(gòu)和繁育系統(tǒng)、快繁技術(shù)、多倍體誘導(dǎo)試驗(yàn),以期為竹葉蘭的保護(hù)、開發(fā)利用以及種質(zhì)資源創(chuàng)新提供基礎(chǔ)資料。主要研究結(jié)果如下:1、通過竹葉蘭人工種植栽培居群的開花物候觀察,竹葉蘭在試驗(yàn)地的盛花期在810月,單花花期3.42±0.83 d。通過離體培養(yǎng)法和聯(lián)苯胺-過氧化氫法測定,竹葉蘭單花開放時間內(nèi)的花粉活力和柱頭可授性逐漸下降;在篩選出花粉萌發(fā)最適培養(yǎng)液的基礎(chǔ)上,采用低溫干燥法進(jìn)行竹葉蘭花粉貯藏試驗(yàn)表明其花粉活力隨貯藏時間變長和貯藏溫度升高而降低。繁育系統(tǒng)試驗(yàn)表明竹葉蘭自交親和,不存在自動自花授粉和無融合生殖,人工自花授粉、人工異花授粉的結(jié)實(shí)率分別為89.47%和79.49%,自然條件下的結(jié)實(shí)率為18%。不同授粉方式產(chǎn)生的果實(shí)形態(tài)在授粉后30 d和60 d時有顯著差異,種子形態(tài)則差異不顯著。授粉后不同時期的種子生活力差異較大,TTC法與萌發(fā)法檢測結(jié)果均以授粉后60 d的種子生活力最高,分別為94.20%和95.50%。2、竹葉蘭種子無菌萌發(fā)及植株再生研究結(jié)果表明:竹葉蘭種子萌發(fā)的最適培養(yǎng)基為1/2 MS+瓊脂7 g.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+活性炭1g.L-1+椰子乳100 mL.L-1+NAA 1.0 mg.L-1+6-BA 2.0 mg.L-1+花寶1號0.5 g.L-1,萌發(fā)率達(dá)83.79%;葉芽分化的最適培養(yǎng)基為1/2 MS+瓊脂7g.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+活性炭1 g.L-1+椰子乳50 mL.L-1+NAA（0.51.0）mg.L-1+6-BA（2.02.5）mg.L-1+花寶1號（11.5）g.L-1;芽增殖的最適培養(yǎng)基為1/2 MS+瓊脂7 g.L-1+蔗糖30 g.L-1+活性炭1 g.L-1+IBA 1mg.L-1+6-BA 3 mg.L-1+NAA 0.5 mg.L-1+100 g.L-1土豆泥,增殖率1.36;芽生根培養(yǎng)的最適培養(yǎng)基為1/2 MS+瓊脂7 g.L-1+蔗糖30 g.L-1+活性炭1 g.L-1+IBA 0.2 mg.L-1+6-BA 2 mg.L-1+NAA（0.20.5）mg.L-1+100 g.L-1香蕉泥;煉苗移栽的最適培養(yǎng)基質(zhì)為珍珠巖:泥炭土=1:1,成活率高達(dá)98%,移栽效果良好。3、竹葉蘭不定芽誘導(dǎo)研究結(jié)果表明:竹葉蘭不定芽誘導(dǎo)外植體表面消毒處理,莖尖以2%次氯酸鈉浸泡1215 min為宜,上部莖段以10%次氯酸鈉浸泡1215 min為宜。竹葉蘭莖尖和上部莖段不定芽誘導(dǎo)和增殖的培養(yǎng)基配方以MS+瓊脂7 g.L-1+蔗糖30 g.L-1+活性炭2 g.L-1+NAA 0.5 mg.L-1+6-BA（1.52）mg.L-1+花寶1號（11.5）g.L-1為宜,不定芽誘導(dǎo)率最高達(dá)40.00%,增殖系數(shù)最大為6.00。4、竹葉蘭多倍體誘導(dǎo)結(jié)果表明:浸泡法以0.10%秋水仙素浸泡12 h的誘變率最高,為23.33%（n=60）;混培法以秋水仙素濃度為0.05%的誘導(dǎo)效果最好,誘變率21.67%（n=60）。不同處理的植株死亡率呈現(xiàn)出隨秋水仙素濃度升高和處理時間延長而增高的變化趨勢。秋水仙素對植株繼代培養(yǎng)有毒害作用,混培法比浸泡法毒害影響持續(xù)時間更長。竹葉蘭多倍體變異植株與二倍體正常植株存在較明顯的形態(tài)學(xué)、細(xì)胞學(xué)及染色體差異,具體表現(xiàn)為:多倍體植株的莖葉變粗大,較正常植株莖粗增大了46.20%,葉型指數(shù)降低了50.12%;葉片變厚,較正常植株增厚了47.83%;葉片氣孔和保衛(wèi)細(xì)胞增大,氣孔密度降低,保衛(wèi)細(xì)胞面積比正常植株增大了59.87%,氣孔密度比正常植株降低了45.99%;染色體水平上,正常植株染色體數(shù)目為2n=2x=40,多倍體變異植株的染色體數(shù)目明顯增多。
黃穎融[6]（2019）在《白芨組織培養(yǎng)及試管球莖膨大技術(shù)研究》文中提出本研究在白芨種子萌發(fā)、試管苗無菌培養(yǎng)的基礎(chǔ)上,研究白芨試管球莖膨大技術(shù),以期探索促使白芨試管球莖膨大的方法,完善現(xiàn)有白芨組培快繁技術(shù),篩選出適宜白芨試管球莖膨大的培養(yǎng)基配方,進(jìn)而用膨大試管球莖替代試管苗進(jìn)行移栽,為白芨的離體快繁、育種和工業(yè)化生產(chǎn)提供參考依據(jù)。結(jié)論如下:（1）白芨試管苗無菌培養(yǎng)體系的建立白芨試管苗無菌培育體系是在白芨種子萌發(fā)的基礎(chǔ)上,采用“誘導(dǎo)原球莖→不定芽分化→不定芽增殖→生根壯苗”的快繁方式,以不定芽進(jìn)行繼代增殖優(yōu)于用原球莖進(jìn)行繼代。促使種子萌發(fā)及原球莖誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+0.01 mg/L NAA+1.0 mg/L 6-BA;不定芽分化和增殖培養(yǎng)基均為MS+0.1 mg/L IBA+1.0 mg/L 6-BA;生根壯苗培養(yǎng)基為1/2MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L GA3。（2）白芨試管球莖膨大技術(shù)上述生根培養(yǎng)基中的試管苗,培養(yǎng)40 d后切去其葉片及根系,將大小相似的球莖接種于各膨大培養(yǎng)基中,研究各因素對白芨試管球莖膨大的影響。正交試驗(yàn)結(jié)果表明:NAA和基本培養(yǎng)基對白芨試管球莖膨大的影響大于6-BA,其中當(dāng)NAA濃度為0.1 mg/L時,試管球莖膨大的各指標(biāo)值均最大;以1/2MS為基本培養(yǎng)基更有利于白芨試管球莖生根和膨大;而6-BA對試管球莖膨大各指標(biāo)值均無顯著影響。此外,蔗糖是影響白芨試管球莖膨大的重要因素,隨蔗糖含量的增加試管球莖逐漸膨大且根生長量及植株長勢漸好,當(dāng)蔗糖濃度為20.040.0 g/L時試管球莖增殖效果較佳。因此,初步篩選出適宜白芨試管球莖膨大的培養(yǎng)基配方為1/2MS+0.1 mg/L NAA+1.0 mg/L6-BA+20 g/L蔗糖。在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn):添加0.5 g/L活性炭的白芨試管球莖鮮重增殖率最大,為33.41%;多效唑(PP333)的促進(jìn)適宜濃度為10 mg/L;水楊酸（SA）對白芨試管球莖膨大的影響不明顯且不適于生根;光周期對白芨試管球莖膨大影響亦不顯著,短期暗培養(yǎng)不利于生根長葉,但促進(jìn)白芨試管球莖的膨大;液體培養(yǎng)基更能促進(jìn)試管球莖對養(yǎng)分的吸收;低濃度的NH4+（10 mmol/L）和H2PO4-（0.625 mmol/L）適宜白芨試管球莖的膨大。相關(guān)性分析結(jié)果表明:生根對試管球莖膨大起促進(jìn)作用,芽分化對試管球莖膨大起抑制效應(yīng);球莖膨大增殖率與試管球莖初始值呈反比,試管球莖各初始值越小,膨大增殖率越高。此外,在初步篩選出的膨大培養(yǎng)基配方上的白芨試管球莖膨大時間動態(tài)結(jié)果表明,試管球莖在膨大培養(yǎng)的前90 d呈緩慢增加的趨勢,并且球莖膨大各指標(biāo)與剛接種時的相應(yīng)指標(biāo)間差異不顯著。鮮重增殖率在第90150 d時呈直線狀顯著增加,直徑和高度增殖率也在第90120 d時增加最快,120150 d時仍在明顯增大。因此,白芨試管球莖壯大培養(yǎng)時間建議時長至少120 d。（3）白芨試管球莖移栽將膨大培養(yǎng)后的試管球莖按直徑大小分為3級:3.55 mm,57 mm,7 mm以上,與生根試管苗對比移栽。結(jié)果表明,白芨試管球莖移栽成活率（80.0098.33%）大于生根試管苗（66.67%）,并且試管球莖越大,移栽成活率越高,球徑>7 mm的試管球莖成活率可達(dá)98%以上。
余云云[7]（2019）在《楨楠組培技術(shù)研究》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理楨楠（Phoebezhennan）,樟科楠屬,常綠高大喬木,桿形勁直,木質(zhì)堅(jiān)硬,生長壽命長,為我國獨(dú)有的珍貴保護(hù)樹種,也是理想的庭院樹種和園林景觀綠化樹種,且木材文理清晰美觀,抗腐蝕性好,是極佳的木材樹種,現(xiàn)在還有人發(fā)現(xiàn)楨楠植物精油有抑制腫瘤細(xì)胞增長的功效。由于楨楠自然分布數(shù)量少,種子采集資源稀缺,抗逆性差,育苗周期長等因素的影響,導(dǎo)致楨楠這一樹種資源日益消減,出現(xiàn)供需嚴(yán)重不足的現(xiàn)象,迫切需要利用組織培養(yǎng)的方式來快速繁育楨楠。目前關(guān)于樟科各樹種的栽培繁育技術(shù)雖有一定的成果,但是關(guān)于楨楠組織培養(yǎng)的研究甚少,目前還沒有發(fā)現(xiàn)成功的案例,只有個別學(xué)者誘導(dǎo)出楨楠的愈傷組織,但是沒有進(jìn)一步深入研究。本研究從無菌體系的建立,初代培養(yǎng),繼代增殖,生根誘導(dǎo)以及愈傷誘導(dǎo)優(yōu)化五個方面對楨楠組織培養(yǎng)技術(shù)進(jìn)行了試驗(yàn)探討,篩選出適宜楨楠的組培條件,構(gòu)建較為完整的楨楠組培體系,對保護(hù)珍稀樹種的種質(zhì)資源,增加楨楠繁育方式,擴(kuò)大園林景觀樹種選擇,解決楨楠資源缺少現(xiàn)狀,廣泛應(yīng)用等具有重要的意義。本文關(guān)于楨楠組培體系研究的主要試驗(yàn)結(jié)果如下:（1）楨楠帶芽莖段的最佳消毒措施是以0.1%Hgc12溶液處理4.5min,污染率控制在40%左右,且萌發(fā)率最高,達(dá)到了 68.42%。在此基礎(chǔ)上增加處理時間,以0.1%Hgc12施以5.5min-15min時的污染率沒有區(qū)別,但是芽萌發(fā)率卻降到了 15.39%。以0.1%升汞浸泡外植體3.0min-3.5min,或者用不同濃度的Naclo溶液浸泡15min時,污染率突增,污染率達(dá)到了 90%左右。（2）楨楠啟動培養(yǎng)時,最宜芽萌發(fā)誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2 MS+2.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/LZT+0.3 mg/L IBA,且外植體采用幼嫩新梢?guī)а壳o段最為適宜,取材時間控制在四月份時,啟動培養(yǎng)的效果最好,污染率只有6.72%,成活率高達(dá)95.96%,芽萌發(fā)率達(dá)到71.19%。（3）誘導(dǎo)楨楠叢生芽增殖培養(yǎng)時,最佳的培養(yǎng)條件是以啟動培養(yǎng)中外植體年齡為2-3月幼苗所萌發(fā)的新芽為材料,以1/2 MS為基礎(chǔ)培養(yǎng)基再添加濃度分別為0.5 mg/L和4.0 mg/L的TDZ和GA3時,新生芽增殖系數(shù)達(dá)到2.92且芽增殖現(xiàn)象出現(xiàn)早,紅綠色新生芽長勢好,生長健壯。（4）楨楠根系誘導(dǎo)時,當(dāng)NAA和IBA都在0.01 mg/L-1.0 mg/L的不同濃度水平下誘導(dǎo)生根時,僅發(fā)現(xiàn)愈傷組織并且未觀察到根系。當(dāng)處理為1/2MS+0.01 mg/L NAA+0.2 g/L活性炭時能成功長出約2cm的白色粗健強(qiáng)壯根系,但是生根率不高,只有 8.33%。（5）進(jìn)行楨楠愈傷誘導(dǎo)時,以幼葉作為外植體材料,基礎(chǔ)培養(yǎng)基選用MS再添加0.5 mg/L6-BA+5.0 mg/LNAA,暗培養(yǎng)一周左右再進(jìn)行光培養(yǎng),愈傷誘導(dǎo)率最高達(dá)96.87%,幾乎每個外植體上都誘導(dǎo)出大量密集點(diǎn)狀愈傷,質(zhì)地疏軟,呈白色偏綠色。
劉子平[8]（2019）在《‘紅雙喜’月季組織培養(yǎng)及其揮發(fā)油成分分析研究》文中提出本試驗(yàn)以‘紅雙喜’月季（Rosa chinensis‘Double Delight’）當(dāng)年生枝條（莖段、葉片、葉柄）、花蕾（花瓣、花絲）為試驗(yàn)材料,利用植物組織培養(yǎng)技術(shù),采用正交設(shè)計(jì)和響應(yīng)面設(shè)計(jì)等試驗(yàn)方法,對其初代培養(yǎng)、繼代增殖、生根培養(yǎng)、煉苗與移栽的各培養(yǎng)階段主要影響因素進(jìn)行研究,建立了‘紅雙喜’月季離體快繁技術(shù)體系,該技術(shù)體系可為其大規(guī)模生產(chǎn)提供理論依據(jù)和技術(shù)指導(dǎo);利用頂空固相微萃取結(jié)合氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法對‘紅雙喜’月季莖段、葉片以及花蕾期花瓣和盛開期花瓣所含揮發(fā)油成分進(jìn)行提取鑒定,明確了揮發(fā)性物質(zhì)的種類及含量,旨在開發(fā)該植物的潛在價(jià)值,為其在其它方面的研究及綜合開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)和提供理論依據(jù)。主要結(jié)果如下:1.初代培養(yǎng)階段（1）外植體消毒:莖段最佳消毒處理為75%C2H5OH 30 s+0.1%HgCl2 6 min,成活率為97.78%;葉片、葉柄最佳消毒處理為75%C2H5OH 45 s+0.1%HgCl2 5 min,成活率分別為84.45%、85.56%;花瓣、花絲最佳消毒處理為75%C2H5OH 30 s+0.1%HgCl2 7 min,成活率分別為97.78%、100%。（2）不定芽誘導(dǎo):以帶芽點(diǎn)莖段為試驗(yàn)材料,其最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+3.00 mg·L-16-BA+0.30 mg·L-11 NAA,誘導(dǎo)率為95.56%。（3）愈傷組織誘導(dǎo):莖段節(jié)間、母株葉片、葉柄、組培苗葉片、花瓣、花絲均可誘導(dǎo)出愈傷組織,其中以母株葉片為愈傷組織誘導(dǎo)最佳外植體,最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+1.79mg·L-1 2,4-D+2.12 mg·L-1 NAA+0.15 mg·L-1 KT,誘導(dǎo)率為93.33%。2.繼代增殖培養(yǎng)階段（1）不定芽增殖:MS+1.00 mg·L-11 6-BA+0.10 mg·L-1 IBA為不定芽最佳增殖培養(yǎng)基,30 g·L-1蔗糖為最佳碳源使用濃度,培養(yǎng)40 d為最佳繼代培養(yǎng)周期,增殖系數(shù)可達(dá)6.89。組培苗長勢良好,葉片呈翠綠色。（2）愈傷組織分化:最佳愈傷組織分化培養(yǎng)基為MS+2.00 mg·L-1 6-BA+0.20 mg·L-1IBA+0.20 mg·L-1 GA3,愈傷組織分化率為43.20%。3.生根培養(yǎng)階段（1）瓶內(nèi)生根:瓶內(nèi)生根為最佳生根方式,其最適培養(yǎng)基為1/4MS+0.05 mg·L-1IBA+2.50 g·L-1活性炭（Ac）,生根率為95.56%,不定根多為白色,根長5.3 cm左右。（2）瓶外生根:將組培苗在室內(nèi)煉苗3 d,扦插在混有生根營養(yǎng)液（1/6MS+0.05mg·L-11 IBA+0.15 mg·L-11 NAA）的基質(zhì)中（V細(xì)沙:V蛭石:V珍珠巖=1:1:1）,同時空氣濕度保持在90%,瓶外生根率可達(dá)88.89%。4.煉苗移栽階段組培苗移栽前最佳煉苗時間為5 d,最適移栽基質(zhì)為V細(xì)沙:V蛭石:V珍珠巖:V椰糠=1:2:3:1,移栽成活率為96.67%。5.揮發(fā)油成分分析:（1）頂空固相微萃取頭篩選:在萃取成分?jǐn)?shù)量及相對含量上,最適‘紅雙喜’月季揮發(fā)油提取的頂空固相微萃取頭為85μm CAR/PDMS。（2）GC-MS分析:在盛開期花瓣、花蕾期花瓣、葉片和莖段中共檢測到萜烯類、醇類、芳香烴類、酯類、醛類等12類126種揮發(fā)性成分,均以醇類化合物相對含量最高,分別為36.78%、36.36%、48.90%、39.43%。盛開期花瓣中有12類62種揮發(fā)性物質(zhì),苯乙醇（29.97%）為其主要香氣成分;花蕾期花瓣中有11類68種揮發(fā)性物質(zhì),主要香氣成分為3,5-二甲氧基甲苯（22.24%）和苯乙醇（21.14%）;葉片中有11類52種成分,其中以芳樟醇（46.08%）為主要揮發(fā)性物質(zhì);莖段中有8類28種成分,主要揮發(fā)性物質(zhì)為1-壬醇（37.62%）。
賈博雅[9]（2019）在《百合科十二卷屬3種多肉植物組織培養(yǎng)體系的研究》文中研究指明百合科（Liliaceae）十二卷屬（Haworthia）多肉植物,因其獨(dú)特的葉片紋路、晶瑩度和稀有性,使得該屬植物成為了觀賞植物中價(jià)格較為昂貴的品種。該屬植物利用傳統(tǒng)方法繁殖困難、繁殖系數(shù)低。為了十二卷屬珍惜多肉植物的種質(zhì)資源保存和優(yōu)良品種的快速繁殖,急需建立組織培養(yǎng)體系。本試驗(yàn)選用百合科十二卷屬三種代表植物玉扇（H.truncata）、玉露（H.cooperi var.pilfera）、月影壽（H.bayeri J.D.Venter&S.A.Hammer）作為試驗(yàn)材料,以花莖和葉片作為外植體,分別從外植體滅菌、愈傷組織誘導(dǎo)、愈傷組織分化和生根移栽幾個方面對三種植物材料進(jìn)行研究,建立了三種植物的組培快繁體系。主要研究結(jié)果如下:1.在外植體消毒階段,以花莖為外植體時,75%乙醇處理30s,0.1%升汞處理5-7min較為適宜,污染率可控制在3.5%以內(nèi);以葉片作為外植體,75%乙醇處理30s,0.1%升汞處理6-9min,消毒效果好,污染率可控制在6.5%以內(nèi)。2.在愈傷組織誘導(dǎo)階段,選用花莖作為外植體時,誘導(dǎo)出的愈傷組織質(zhì)量更好,且培養(yǎng)時間較短。玉扇花莖的最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.1 mg·L-1 NAA+0.5mg·L-1 KT,玉扇葉片最佳愈傷培養(yǎng)基為MS+0.3 mg·L-1 NAA+1.5 mg·L-1 KT;玉露花莖最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基為:MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.3 mg·L-1 NAA+1.5 mg·L-1 KT,玉露葉片最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基為:MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.3 mg·L-1 NAA+1.0 mg·L-1 KT;月影壽花莖最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+2.0 mg·L-1 6-BA+0.3 mg·L-1 NAA+1.0 mg·L-1 KT,月影壽葉片最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+3.0 mg·L-1 6-BA+0.5 mg·L-1 NAA+1.0 mg·L-1 KT。3.在愈傷組織分化階段,玉扇最佳愈傷分化培養(yǎng)基為MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.1 mg·L-1NAA+0.5 mg·L-1 KT;玉露最佳愈傷分化培養(yǎng)基為MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.5 mg·L-1NAA+1.0 mg·L-1 KT;月影壽最佳愈傷分化培養(yǎng)基為MS+1.0 mg·L-1 6-BA+0.1 mg·L-1NAA+1.5 mg·L-1 KT。4.在生根誘導(dǎo)階段,玉扇最佳生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.5 mg·L-1 NAA+3.0 mg·L-1 IBA+10.0 g·L-1蔗糖+7.0 g·L-1活性炭;玉露最佳生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.5 mg·L-1 NAA+1.5mg·L-1 IBA+50.0 g·L-1蔗糖+7.0 g·L-1活性炭;月影壽最佳生根培養(yǎng)基為1/2 MS+1.5 mg·L-1IBA+30.0 g·L-1蔗糖+7.0 g·L-1活性炭。生根培養(yǎng)時加入適量活性炭,可以顯著提高試管苗的生根率,并使植株健壯飽滿。5.在煉苗移栽階段,試管苗最佳移栽基質(zhì)為:火山巖:泥炭土:珍珠巖=2:1:1（體積比）,移栽成活率為86.0%。
錢廣藝[10]（2019）在《中國水仙離體再生體系的建立》文中指出本研究以三個種源地（福建漳州、上海崇明、舟山普陀）‘玉玲瓏’鱗莖盤為外植體誘導(dǎo)再生小鱗莖,以期找到鱗莖盤最佳消毒方法,得出最佳培養(yǎng)基,為離體快繁體系建立打下基礎(chǔ);三個種源地‘玉玲瓏’的再生小鱗莖、上海種源地‘玉玲瓏’中花梗、子房為外植體誘導(dǎo)愈傷組織,以期得到最佳愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基;在相同培養(yǎng)基上誘導(dǎo)不同外植體,測定其在愈傷發(fā)生過程中內(nèi)源激素含量與生理變化,為中國水仙離體發(fā)生過程提供一些生理方面的基礎(chǔ)資料。主要研究結(jié)果如下:1.中國水仙鱗莖盤離體快繁體系構(gòu)建（1）三個種源地‘玉玲瓏’鱗莖盤最佳消毒方法不同。漳州和普陀:3%多菌靈溶液浸泡5 h+75%酒精50 s+20%次氯酸鈉20 min+0.1%PPM培養(yǎng)基;崇明:3%多菌靈溶液浸泡5 h+75%酒精50 s+20%次氯酸鈉20 min。（2）較高6-BA有利于鱗莖盤繼代增殖。最佳增殖培養(yǎng)基:漳州與崇明:MS+9 mg/L 6-BA+1 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L NAA;普陀:MS+9mg/L 6-BA+0.5 mg/L 2,4-D。（3）最佳小鱗莖誘導(dǎo)培養(yǎng)基:漳州:MS+3 mg/L 6-BA+0.1 mg/L2,4-D;崇明和普陀:MS+3 mg/L 6-BA+0.1 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L NAA。（4）生根率可達(dá)100%,最佳生根培養(yǎng)基:1/2 MS+15 g/L蔗糖+4.6 g/L卡拉膠+1.0 mg/L NAA+2g/L AC。2.愈傷組織的誘導(dǎo)（1）三個種源地‘玉玲瓏’再生小鱗莖進(jìn)行愈傷組織誘導(dǎo),愈傷誘導(dǎo)率為56.67-58.89%,最佳培養(yǎng)基:漳州MS+3.0 mg/L 6-BA+3.0 mg/L 2,4-D+1.0 mg/L NAA;崇明MS+3.0 mg/L6-BA+3.0 mg/L 2,4-D+3.0 mg/L NAA;普陀MS+3.0 mg/L 6-BA+9.0 mg/L 2,4-D+1.0 mg/L NAA。（2）花梗誘導(dǎo)率最高可達(dá)100%,最佳培養(yǎng)基為MS+3.0 mg/L 6-BA+2.0 mg/L2,4-D+1.5-2.5 mg/L NAA+1.0 mg/L KT;表面刻傷未抽葶期子房可以提高誘導(dǎo)率;盛花期子房刻傷后誘導(dǎo)率沒有明顯提高。未抽葶期兩類子房最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基分別為MS+2.0 mg/L6-BA+6.0 mg/L 2,4-D+2.5 mg/L NAA+1.0 mg/L KT;MS+1.0 mg/L 6-BA+6.0 mg/L2,4-D+2.5 mg/L NAA+0.5 mg/L KT。盛花期兩類子房最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基分別為MS+3.0 mg/L6-BA+6.0 mg/L 2,4-D+3.5 mg/L NAA+0.5 mg/L KT;MS+3.0 mg/L 6-BA+6.0 mg/L2,4-D+1.5-3.5 mg/L NAA+0.5 mg/L KT。3.不同部位愈傷組織誘導(dǎo)過程中內(nèi)源激素變化（1）引入培養(yǎng)指數(shù)評價(jià)不同外植體在相同培養(yǎng)基誘導(dǎo)愈傷組織綜合效果。（2）在愈傷組織誘導(dǎo)過程中,啟動期與分裂期的ABA、IAA含量較低,在形成期時,ABA含量較高,在形成期時IAA的變化出現(xiàn)不同,其中嫩葉、花藥含量下降,而花梗、子房卻上升。（3）嫩葉ABA/GA3愈傷誘導(dǎo)啟動期上升,其他三種外植體下降,分裂期下降,其他三種外植體上升;子房ABA/GA3在形成期上升,其他三種外植體下降?；ü！⒒ㄋ幣c子房IAA/ZR在整個愈傷誘導(dǎo)過程中都下降。葉片與花梗在愈傷啟動期時IAA/GA3變化趨勢相反,在分裂期與形成期時變化相同?；ㄋ幣c子房ABA/ZR在啟動期時下降,與嫩葉變化趨勢相反,三者在分裂期與形成期均下降。4.不同部位愈傷組織分化過程中生理變化花梗、葉片在愈傷組織誘導(dǎo)過程中SOD、POD及CAT活力變化整體呈倒“V”型?；ㄋ嶱OD、SOD、CAT變化趨勢大致相同,子房POD、SOD、CAT變化趨勢也大致相同。葉片等四種外植體在愈傷誘導(dǎo)過程中蛋白質(zhì)含量均先下降,但花梗與葉片在第7 d消耗到最低,子房在第14 d消耗量達(dá)到最大,而花藥是在第3 d時達(dá)到第一個低點(diǎn),隨后上升。葉片和花梗在第7 d后、子房在第14 d后蛋白質(zhì)含量上升。四種不同類型外植體在可溶性糖的變化整體上均呈下降趨勢。
二、棗組培快繁技術(shù)及正交設(shè)計(jì)應(yīng)用試驗(yàn)（論文開題報(bào)告）
（1）論文研究背景及目的
此處內(nèi)容要求：
首先簡單簡介論文所研究問題的基本概念和背景，再而簡單明了地指出論文所要研究解決的具體問題，并提出你的論文準(zhǔn)備的觀點(diǎn)或解決方法。
寫法范例：
本文主要提出一款精簡64位RISC處理器存儲管理單元結(jié)構(gòu)并詳細(xì)分析其設(shè)計(jì)過程。在該MMU結(jié)構(gòu)中,TLB采用叁個分離的TLB,TLB采用基于內(nèi)容查找的相聯(lián)存儲器并行查找,支持粗粒度為64KB和細(xì)粒度為4KB兩種頁面大小,采用多級分層頁表結(jié)構(gòu)映射地址空間,并詳細(xì)論述了四級頁表轉(zhuǎn)換過程,TLB結(jié)構(gòu)組織等。該MMU結(jié)構(gòu)將作為該處理器存儲系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)的一個重要組成部分。
（2）本文研究方法
調(diào)查法：該方法是有目的、有系統(tǒng)的搜集有關(guān)研究對象的具體信息。
觀察法：用自己的感官和輔助工具直接觀察研究對象從而得到有關(guān)信息。
實(shí)驗(yàn)法：通過主支變革、控制研究對象來發(fā)現(xiàn)與確認(rèn)事物間的因果關(guān)系。
文獻(xiàn)研究法：通過調(diào)查文獻(xiàn)來獲得資料，從而全面的、正確的了解掌握研究方法。
實(shí)證研究法：依據(jù)現(xiàn)有的科學(xué)理論和實(shí)踐的需要提出設(shè)計(jì)。
定性分析法：對研究對象進(jìn)行“質(zhì)”的方面的研究，這個方法需要計(jì)算的數(shù)據(jù)較少。
定量分析法：通過具體的數(shù)字，使人們對研究對象的認(rèn)識進(jìn)一步精確化。
跨學(xué)科研究法：運(yùn)用多學(xué)科的理論、方法和成果從整體上對某一課題進(jìn)行研究。
功能分析法：這是社會科學(xué)用來分析社會現(xiàn)象的一種方法，從某一功能出發(fā)研究多個方面的影響。
模擬法：通過創(chuàng)設(shè)一個與原型相似的模型來間接研究原型某種特性的一種形容方法。
三、棗組培快繁技術(shù)及正交設(shè)計(jì)應(yīng)用試驗(yàn)（論文提綱范文）
（1）金絲楸嫩枝扦插及組培快繁技術(shù)研究（論文提綱范文）
| 符號說明 |
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 研究背景 |
| 1.2 扦插生根的生理生化研究進(jìn)展 |
| 1.2.1 生根關(guān)聯(lián)酶 |
| 1.2.2 營養(yǎng)物質(zhì) |
| 1.2.3 內(nèi)源激素 |
| 1.3 組織培養(yǎng)研究進(jìn)展 |
| 1.4 楸樹無性繁殖技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.4.1 埋根繁殖 |
| 1.4.2 嫁接繁殖 |
| 1.4.3 扦插繁殖 |
| 1.4.4 楸樹組織培養(yǎng) |
| 1.5 研究的目的意義 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 嫩枝扦插 |
| 2.1.1 試驗(yàn)地概況 |
| 2.1.2 試驗(yàn)材料 |
| 2.1.3 試驗(yàn)設(shè)計(jì) |
| 2.1.4 扦插管理 |
| 2.1.5 觀測指標(biāo)及測定方法 |
| 2.1.5.1 扦插觀測指標(biāo)及測定方法 |
| 2.1.5.2 生理生化研究觀測指標(biāo)及測定方法 |
| 2.2 組織培養(yǎng) |
| 2.2.1 試驗(yàn)材料 |
| 2.2.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì) |
| 2.2.2.1 外植體消毒處理 |
| 2.2.2.2 初代培養(yǎng) |
| 2.2.2.3 繼代培養(yǎng) |
| 2.2.2.4 生根培養(yǎng) |
| 2.2.2.5 組培苗移栽 |
| 2.2.3 觀測指標(biāo)及測定方法 |
| 2.3 數(shù)據(jù)分析 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 金絲楸嫩枝扦插及生根生理生化分析 |
| 3.1.1 金絲楸嫩枝扦插生根分析 |
| 3.1.2 金絲楸嫩枝扦插生根過程中生根關(guān)聯(lián)酶活性變化 |
| 3.1.2.1 過氧化物酶(POD)活性變化 |
| 3.1.2.2 多酚氧化酶(PPO)活性變化 |
| 3.1.2.3 吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性變化 |
| 3.1.3 金絲楸嫩枝扦插生根過程中營養(yǎng)物質(zhì)含量變化 |
| 3.1.3.1 可溶性糖含量變化 |
| 3.1.3.2 可溶性蛋白含量變化 |
| 3.1.4 金絲楸嫩枝扦插生根過程中內(nèi)源激素含量變化 |
| 3.1.4.1 吲哚乙酸(IAA)含量變化 |
| 3.1.4.2 玉米素核苷(ZR)含量變化 |
| 3.1.4.3 脫落酸(ABA)含量變化 |
| 3.1.5 金絲楸嫩枝扦插生根率與各生理生化指標(biāo)相關(guān)性分析 |
| 3.2 金絲楸組培快繁技術(shù) |
| 3.2.1 外植體消毒處理 |
| 3.2.2 初代培養(yǎng) |
| 3.2.3 繼代培養(yǎng) |
| 3.2.4 生根培養(yǎng) |
| 3.2.4.1 試管內(nèi)生根 |
| 3.2.4.2 試管外生根 |
| 3.2.5 組培苗移栽 |
| 4 討論 |
| 4.1 金絲楸嫩枝扦插生根 |
| 4.1.1 金絲楸嫩枝扦插生根過程中生根關(guān)聯(lián)酶的變化 |
| 4.1.2 金絲楸嫩枝扦插生根過程中營養(yǎng)物質(zhì)的變化 |
| 4.1.3 金絲楸嫩枝扦插生根過程中內(nèi)源激素的變化 |
| 4.2 金絲楸組培快繁技術(shù) |
| 4.2.1 外植體消毒處理 |
| 4.2.2 初代培養(yǎng) |
| 4.2.3 繼代培養(yǎng) |
| 4.2.4 生根培養(yǎng) |
| 4.2.5 組培苗移栽 |
| 5 結(jié)論 |
| 5.1 金絲楸嫩枝扦插的生理生化特征 |
| 5.2 金絲楸組培快繁技術(shù)體系 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 附圖 |
| 致謝 |
（2）野生黃精離體快繁技術(shù)體系的優(yōu)化（論文提綱范文）
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 不同植物生長調(diào)節(jié)劑及其濃度對黃精組培苗繼代增殖的影響 |
| 1.2.2 不同培養(yǎng)溫度對黃精組培苗繼代增殖的影響 |
| 1.2.3 不同植物生長調(diào)節(jié)劑及其濃度對黃精組培苗生根的影響 |
| 1.2.4 不同培養(yǎng)容器對黃精組培苗生根的影響 |
| 1.2.5 培養(yǎng)條件 |
| 1.2.6 煉苗和移栽 |
| 1.3 數(shù)據(jù)分析 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 黃精組培苗繼代增殖的適宜培養(yǎng)基 |
| 2.2 黃精組培苗繼代增殖的適宜溫度 |
| 2.3 黃精組培苗生根適宜培養(yǎng)基 |
| 2.4 黃精組培苗生根的適宜培養(yǎng)容器 |
| 2.5 組培苗移栽 |
| 3 討論 |
（3）黑果枸杞遺傳多樣性及快繁體系的初步研究（論文提綱范文）
| 致謝 |
| 摘要 |
| abstract |
| 前言 |
| 1 文獻(xiàn)綜述 |
| 1.1 植物遺傳多樣性 |
| 1.1.1 植物遺傳多樣性研究方法 |
| 1.1.2 經(jīng)濟(jì)林樹種遺傳多樣性 |
| 1.1.3 黑果枸杞的遺傳多樣性 |
| 1.2 植物組織培養(yǎng)技術(shù) |
| 1.2.1 植物組織培養(yǎng)研究方法 |
| 1.2.2 經(jīng)濟(jì)林樹種組織培養(yǎng)技術(shù) |
| 1.2.3 黑果枸杞組織培養(yǎng)技術(shù) |
| 1.3 本研究的目的意義和技術(shù)路線 |
| 1.3.1 研究的目的與意義 |
| 1.3.2 技術(shù)路線 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 黑果枸杞SSR引物篩選及遺傳多樣性分析 |
| 2.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 2.1.2 實(shí)驗(yàn)儀器設(shè)備 |
| 2.1.3 試驗(yàn)試劑 |
| 2.1.4 DNA提取 |
| 2.1.5 黑果枸杞轉(zhuǎn)錄組獲取、序列拼接和功能注釋 |
| 2.1.6 引物設(shè)計(jì) |
| 2.1.7 DNA濃度檢測 |
| 2.1.8 SSR-PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化 |
| 2.1.9 引物的篩選 |
| 2.1.10 瓊脂糖凝膠電泳 |
| 2.1.11 聚丙烯酰胺凝膠電泳 |
| 2.1.12 數(shù)據(jù)處理 |
| 2.2 黑果枸杞組織培養(yǎng)體系的建立 |
| 2.2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
| 2.2.2 主要儀器和藥劑 |
| 2.2.3 制備培養(yǎng)基 |
| 2.2.4 無菌苗培養(yǎng) |
| 2.2.5 愈傷組織誘導(dǎo) |
| 2.2.6 黑果枸杞不定芽的誘導(dǎo)與增殖 |
| 2.2.7 生根培養(yǎng) |
| 2.2.8 數(shù)據(jù)處理與分析 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 黑果枸杞SSR引物篩選及遺傳多樣性 |
| 3.1.1 黑果枸杞DNA提取 |
| 3.1.2 黑果枸杞轉(zhuǎn)錄組序列拼接和功能注釋 |
| 3.1.3 黑果枸杞轉(zhuǎn)錄組SSR位點(diǎn)鑒別及引物設(shè)計(jì) |
| 3.1.4 SSR-PCR反應(yīng)體系優(yōu)化分析 |
| 3.1.5 引物篩選結(jié)果及多態(tài)性分析 |
| 3.1.6 黑果枸杞的遺傳多樣性分析 |
| 3.1.7 黑果枸杞的群體分化和群體結(jié)構(gòu)分析 |
| 3.1.8 黑果枸杞群體遺傳距離、地理隔離和遺傳瓶頸分析 |
| 3.2 黑果枸杞莖段組織培養(yǎng)體系 |
| 3.2.1 黑果枸杞莖段愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng) |
| 3.2.2 黑果枸杞莖段愈傷組織不定芽誘導(dǎo)與增殖 |
| 3.2.3 黑果枸杞莖段愈傷組織生根誘導(dǎo) |
| 4 討論 |
| 4.1 黑果枸杞SSR引物篩選及遺傳多樣性 |
| 4.1.1 基于黑果枸杞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)開發(fā)黑果枸杞SSR標(biāo)記 |
| 4.1.2 黑果枸杞的遺傳多樣性及群體遺傳分化 |
| 4.1.3 黑果枸杞種質(zhì)資源保護(hù)和遺傳育種的群體樣本選擇 |
| 4.2 黑果枸杞苗木組織培養(yǎng)技術(shù) |
| 4.2.1 外植體的選擇與滅菌 |
| 4.2.2 植物激素對組織培養(yǎng)過程中的影響 |
| 5 主要結(jié)論 |
| 5.1 黑果枸杞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)及遺傳多樣性研究 |
| 5.2 組織培養(yǎng) |
| 攻讀學(xué)位期間發(fā)表的學(xué)術(shù)論文 |
| 參考文獻(xiàn) |
（4）兩種具有園林用途的野生植物組織培養(yǎng)與再生體系研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 縮略詞表 |
| 1 引言 |
| 1.1 研究背景 |
| 1.1.1 野生植物及資源概況 |
| 1.1.2 野生植物在城市綠化建設(shè)中的意義 |
| 1.1.3 野生植物在城市建設(shè)中的應(yīng)用現(xiàn)狀 |
| 1.1.4 野生植物的應(yīng)用前景 |
| 1.2 國內(nèi)外研究現(xiàn)狀 |
| 1.2.1 組織培養(yǎng)的應(yīng)用與發(fā)展 |
| 1.2.2 甘蒙錦雞兒和蒙古蕕相關(guān)研究 |
| 1.3 組織培養(yǎng)的影響因素 |
| 1.3.1 培養(yǎng)基的類型 |
| 1.3.2 激素種類及濃度 |
| 1.3.3 外植體 |
| 1.3.4 培養(yǎng)條件 |
| 1.4 研究內(nèi)容 |
| 1.5 研究的目的與意義 |
| 2 甘蒙錦雞兒的組培快繁技術(shù)研究 |
| 2.1 以甘蒙錦雞兒種子誘導(dǎo)叢生芽獲得再生植株的組培快繁技術(shù)研究 |
| 2.1.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 2.1.2 結(jié)果與分析 |
| 2.1.3 討論 |
| 2.1.4 小結(jié) |
| 2.2 以甘蒙錦雞兒種子誘導(dǎo)愈傷獲得再生植株的組培快繁技術(shù)研究 |
| 2.2.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 2.2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.2.3 討論 |
| 2.2.4 小結(jié) |
| 3 蒙古蕕的組培快繁技術(shù)研究 |
| 3.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 3.1.1 外植體的選擇及滅菌 |
| 3.1.2 初代誘導(dǎo)培養(yǎng) |
| 3.1.3 繼代增殖 |
| 3.1.4 生根培養(yǎng) |
| 3.1.5 煉苗及移栽 |
| 3.1.6 培養(yǎng)條件 |
| 3.1.7 數(shù)據(jù)處理 |
| 3.2 結(jié)果與分析 |
| 3.2.1 外植體的滅菌 |
| 3.2.2 不同激素配比對莖段誘導(dǎo)的影響 |
| 3.2.3 不同激素配比對蒙古蕕不定芽增殖培養(yǎng)的影響 |
| 3.2.4 激素配比對蒙古蕕不定芽生根培養(yǎng)的影響 |
| 3.2.5 煉苗與移栽 |
| 3.3 討論 |
| 3.4 小結(jié) |
| 4 結(jié)論與展望 |
| 4.1 結(jié)論 |
| 4.2 展望 |
| 致謝 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 作者簡介 |
（5）竹葉蘭繁育系統(tǒng)與快繁技術(shù)及其多倍體誘導(dǎo)研究（論文提綱范文）
| 縮略詞表 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 引言 |
| 1.1 蘭科植物繁育系統(tǒng)研究概況 |
| 1.2 蘭科植物快繁技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.2.1 外植體的選擇 |
| 1.2.2 基本培養(yǎng)基的選擇 |
| 1.2.3 外源激素與添加物的調(diào)節(jié) |
| 1.3 蘭科植物多倍體育種研究進(jìn)展 |
| 1.4 多倍體植株鑒定方法 |
| 1.4.1 形態(tài)學(xué)鑒定法 |
| 1.4.2 染色體計(jì)數(shù)鑒定 |
| 1.4.3 細(xì)胞學(xué)鑒定法 |
| 1.4.4 分子水平鑒定法 |
| 1.4.5 生理指標(biāo)鑒定法 |
| 1.5 竹葉蘭研究進(jìn)展 |
| 1.6 研究目的意義、內(nèi)容與技術(shù)路線 |
| 1.6.1 研究目的意義 |
| 1.6.2 研究內(nèi)容 |
| 1.6.3 技術(shù)路線 |
| 第二章 竹葉蘭花部結(jié)構(gòu)與繁育系統(tǒng)研究 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 2.1.2 試驗(yàn)地概況 |
| 2.1.3 花期與花部形態(tài)觀測 |
| 2.1.4 花粉萌發(fā)與貯藏 |
| 2.1.5 花粉活力與柱頭可授性 |
| 2.1.6 繁育系統(tǒng)研究 |
| 2.1.7 果實(shí)和種子形態(tài)特征觀測 |
| 2.1.8 種子活力檢測 |
| 2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.2.1 試驗(yàn)地竹葉蘭開花物候和花部形態(tài)特征 |
| 2.2.2 花粉萌發(fā)與貯藏 |
| 2.2.3 花粉活力與柱頭可授性測定結(jié)果 |
| 2.2.4 繁育系統(tǒng)研究 |
| 2.2.5 不同授粉方式的果實(shí)和種子形態(tài)差異 |
| 2.2.6 不同時期的種子生活力差異 |
| 2.3 討論與結(jié)論 |
| 2.3.1 討論 |
| 2.3.2 結(jié)論 |
| 第三章 竹葉蘭種子無菌萌發(fā)與植株再生研究 |
| 3.1 材料與方法 |
| 3.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 3.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 3.2 結(jié)果與分析 |
| 3.2.1 不同激素和添加物對種子萌發(fā)的影響 |
| 3.2.2 不同激素和添加物對原球莖膨大的影響 |
| 3.2.3 不同激素和添加物對葉芽分化的影響 |
| 3.2.4 不同激素和添加物對芽增殖的影響 |
| 3.2.5 不同激素和添加物對芽生根的影響 |
| 3.2.6 煉苗移栽 |
| 3.3 討論與結(jié)論 |
| 3.3.1 討論 |
| 3.3.2 結(jié)論 |
| 第四章 竹葉蘭不定芽誘導(dǎo)技術(shù)研究 |
| 4.1 材料與方法 |
| 4.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 4.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 4.2 結(jié)果與分析 |
| 4.2.1 消毒方式篩選 |
| 4.2.2 培養(yǎng)基對不定芽誘導(dǎo)的影響 |
| 4.2.3 培養(yǎng)基對不定芽增殖的影響 |
| 4.3 討論與結(jié)論 |
| 4.3.1 討論 |
| 4.3.2 結(jié)論 |
| 第五章 竹葉蘭多倍體誘導(dǎo)試驗(yàn) |
| 5.1 材料與方法 |
| 5.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 5.1.2 浸泡法 |
| 5.1.3 混培法 |
| 5.1.4 多倍體植株的鑒定 |
| 5.2 結(jié)果與分析 |
| 5.2.1 秋水仙素對原球莖初代培養(yǎng)的影響 |
| 5.2.2 不同處理對繼代培養(yǎng)及誘變率的影響 |
| 5.2.3 竹葉蘭多倍體初步鑒定 |
| 5.3 討論與結(jié)論 |
| 5.3.1 討論 |
| 5.3.2 結(jié)論 |
| 第六章 結(jié)論與展望 |
| 6.1 結(jié)論 |
| 6.2 本研究存在的不足和展望 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 攻讀學(xué)位期間的學(xué)術(shù)論文與研究成果 |
| 致謝 |
（6）白芨組織培養(yǎng)及試管球莖膨大技術(shù)研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 緒論 |
| 1.1 白芨概述 |
| 1.1.1 科屬與分布 |
| 1.1.2 形態(tài)特征 |
| 1.1.3 生長習(xí)性與環(huán)境 |
| 1.1.4 白芨的應(yīng)用價(jià)值 |
| 1.2 白芨繁殖方法 |
| 1.3 白芨組織培養(yǎng)與快繁技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.3.1 外植體的選擇 |
| 1.3.2 基本培養(yǎng)基類型對白芨組織培養(yǎng)的影響 |
| 1.3.3 植物生長調(diào)節(jié)劑對白芨組織培養(yǎng)的影響 |
| 1.4 試管球莖膨大技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.4.1 基本培養(yǎng)基和植物生長調(diào)節(jié)劑種類及配比對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.2 蔗糖對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.3 活性炭(AC)對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.4 多效唑(PP333)對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.5 水楊酸(SA)對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.6 光周期對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.7 培養(yǎng)方式對試管球莖膨大的影響 |
| 1.4.8 礦質(zhì)養(yǎng)分對試管球莖膨大的影響 |
| 1.5 研究目的及意義 |
| 1.6 技術(shù)路線 |
| 2 白芨試管苗無菌培養(yǎng)體系的建立 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 2.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 2.2 培養(yǎng)條件 |
| 2.3 數(shù)據(jù)處理 |
| 2.4 結(jié)果與分析 |
| 2.4.1 種子萌發(fā)及誘導(dǎo)原球莖 |
| 2.4.2 原球莖增殖 |
| 2.4.3 植物生長調(diào)節(jié)劑對不定芽分化的影響 |
| 2.4.4 不定芽增殖 |
| 2.4.5 生根壯苗 |
| 2.5 討論與小結(jié) |
| 2.5.1 討論 |
| 2.5.2 小結(jié) |
| 3 白芨試管球莖膨大技術(shù) |
| 3.1 材料與方法 |
| 3.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 3.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 3.2 培養(yǎng)條件 |
| 3.3 數(shù)據(jù)處理 |
| 3.4 結(jié)果與分析 |
| 3.4.1 不同植物生長調(diào)節(jié)劑種類及基本培養(yǎng)基配比對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.2 培養(yǎng)基中不同蔗糖濃度對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.3 AC對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.4 PP333對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.5 SA對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.6 光周期對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.7 培養(yǎng)基狀態(tài)對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.4.8 白芨試管球莖不同培養(yǎng)時間生長變化趨勢 |
| 3.4.9 礦質(zhì)養(yǎng)分對白芨試管球莖膨大的影響 |
| 3.5 討論與小結(jié) |
| 3.5.1 討論 |
| 3.5.2 小結(jié) |
| 4 白芨試管球莖移栽 |
| 4.1 材料與方法 |
| 4.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 4.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 4.2 培養(yǎng)條件 |
| 4.3 數(shù)據(jù)處理 |
| 4.4 結(jié)果與分析 |
| 4.5 討論與小結(jié) |
| 4.5.1 討論 |
| 4.5.2 小結(jié) |
| 5 結(jié)論 |
| 5.1 主要結(jié)論 |
| 5.2 創(chuàng)新點(diǎn) |
| 5.3 存在問題和研究展望 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 英文縮略語表 |
| 圖版 |
| 致謝 |
| 作者簡介 |
（7）楨楠組培技術(shù)研究（論文提綱范文）
| 致謝 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文獻(xiàn)綜述 |
| 1.1 組織培養(yǎng)技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.1.1 植物組織培養(yǎng)的概述 |
| 1.1.2 植物組織培養(yǎng)的形成 |
| 1.1.3 植物組織培養(yǎng)的分類 |
| 1.1.4 植物組織培養(yǎng)的應(yīng)用 |
| 1.2 木本植物組培研究進(jìn)展 |
| 1.2.1 木本植物組織培養(yǎng)的影響因素 |
| 1.2.2 木本植物組培玻璃化現(xiàn)象 |
| 1.2.3 木本植物組培中褐化現(xiàn)象 |
| 1.3 楨楠組培研究現(xiàn)狀 |
| 1.4 楨楠簡介及研究概況 |
| 1.4.1 楨楠簡介 |
| 1.4.2 繁殖培育技術(shù)研究概況 |
| 1.4.3 楨楠的觀賞價(jià)值及園林應(yīng)用 |
| 第二章 引言 |
| 第三章 材料與方法 |
| 3.1 試驗(yàn)地點(diǎn) |
| 3.2 試驗(yàn)材料 |
| 3.2.1 植物材料 |
| 3.2.2 植物激素 |
| 3.2.3 基礎(chǔ)培養(yǎng)基 |
| 3.2.4 試驗(yàn)試劑與儀器 |
| 3.3 技術(shù)路線 |
| 3.4 試驗(yàn)方法 |
| 3.4.1 楨楠組織培養(yǎng)的直接發(fā)生途徑 |
| 3.4.2 楨楠組織培養(yǎng)的間接發(fā)生途徑 |
| 3.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析方法 |
| 第四章 結(jié)果與分析 |
| 4.1 楨楠組織培養(yǎng)的直接發(fā)生途徑 |
| 4.1.1 外植體最佳滅菌方法的確定以及污染率的動態(tài)變化 |
| 4.1.2 初代培養(yǎng) |
| 4.1.3 繼代增殖 |
| 4.1.4 生根培養(yǎng) |
| 4.2 楨楠組織培養(yǎng)的間接發(fā)生途徑 |
| 第五章 結(jié)論與討論 |
| 5.1 討論 |
| 5.2 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 附錄 |
| 作者簡介 |
（8）‘紅雙喜’月季組織培養(yǎng)及其揮發(fā)油成分分析研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 前言 |
| 第一章 文獻(xiàn)綜述 |
| 1.1 月季概述 |
| 1.2 月季繁殖技術(shù)概述 |
| 1.3 月季揮發(fā)油研究概述 |
| 1.4 研究目的意義 |
| 1.5 技術(shù)路線 |
| 第二章 ‘紅雙喜’月季初代培養(yǎng)的研究 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.3 討論 |
| 2.4 小結(jié) |
| 第三章 ‘紅雙喜’月季繼代增殖培養(yǎng)的研究 |
| 3.1 材料與方法 |
| 3.2 結(jié)果與分析 |
| 3.3 討論 |
| 3.4 小結(jié) |
| 第四章 ‘紅雙喜’月季生根培養(yǎng)的研究 |
| 4.1 材料與方法 |
| 4.2 結(jié)果與分析 |
| 4.3 討論 |
| 4.4 小結(jié) |
| 第五章 ‘紅雙喜’月季煉苗與移栽的研究 |
| 5.1 材料與方法 |
| 5.2 結(jié)果與分析 |
| 5.3 討論 |
| 5.4 小結(jié) |
| 第六章 ‘紅雙喜’月季揮發(fā)油成分測定分析 |
| 6.1 材料與方法 |
| 6.2 結(jié)果與分析 |
| 6.3 討論 |
| 6.4 小結(jié) |
| 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 附錄 |
| 作者簡介 |
| 致謝 |
（9）百合科十二卷屬3種多肉植物組織培養(yǎng)體系的研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 前言 |
| 第一章 文獻(xiàn)綜述 |
| 第一節(jié) 研究背景及進(jìn)展 |
| 1.1 植物組織培養(yǎng)概述 |
| 1.2 多肉植物概述 |
| 1.3 百合科十二卷屬多肉植物概述 |
| 1.4 三種供試材料介紹 |
| 1.5 百合科十二卷屬多肉植物組培研究現(xiàn)狀 |
| 1.6 百合科其他屬植物組培研究現(xiàn)狀 |
| 第二節(jié) 多肉植物國內(nèi)外研究進(jìn)展 |
| 第三節(jié) 研究目的及技術(shù)路線 |
| 3.1 研究目的及意義 |
| 3.2 技術(shù)路線 |
| 第二章 研究內(nèi)容 |
| 第一節(jié) 三種材料的啟動培養(yǎng) |
| 1.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 1.2 結(jié)果與分析 |
| 1.3 討論與小結(jié) |
| 第二節(jié) 三種材料的增殖繼代培養(yǎng) |
| 2.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.3 討論與小結(jié) |
| 第三節(jié) 三種材料的生根培養(yǎng) |
| 3.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 3.2 結(jié)果與分析 |
| 3.3 討論與小結(jié) |
| 第四節(jié) 三種材料的煉苗移栽 |
| 4.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 4.2 結(jié)果與分析 |
| 4.3 討論與小結(jié) |
| 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 作者簡介 |
| 致謝 |
（10）中國水仙離體再生體系的建立（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 緒論 |
| 1.1 引言 |
| 1.2 國內(nèi)外水仙組織培養(yǎng)研究現(xiàn)狀 |
| 1.2.1 水仙離體快繁技術(shù)研究進(jìn)展 |
| 1.2.2 植物離體培養(yǎng)過程中內(nèi)源激素及生理的研究進(jìn)展 |
| 1.3 研究內(nèi)容和意義 |
| 1.3.1 研究內(nèi)容 |
| 1.3.2 研究意義 |
| 1.3.3 技術(shù)路線 |
| 第二章 中國水仙‘玉玲瓏’鱗莖盤組培快繁體系構(gòu)建 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 2.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.2.1 消毒效果比較 |
| 2.2.2 水仙初代、繼代培養(yǎng) |
| 2.2.3 分化誘導(dǎo)培養(yǎng) |
| 2.2.4 不同激素對小鱗莖生根的影響 |
| 2.3 討論 |
| 第三章 組培再生小鱗莖、花梗及子房的愈傷組織誘導(dǎo) |
| 3.1 材料與方法 |
| 3.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 3.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 3.1.3 數(shù)據(jù)計(jì)算與處理 |
| 3.2 結(jié)果與分析 |
| 3.2.1 不同產(chǎn)地再生小鱗莖誘導(dǎo)愈傷組織 |
| 3.2.2 不同外植體消毒結(jié)果 |
| 3.2.3 不同外植體愈傷誘導(dǎo)結(jié)果 |
| 3.3 討論 |
| 第四章 嫩葉及花器官愈傷誘導(dǎo)過程中內(nèi)源激素變化研究 |
| 4.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 4.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 4.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 4.1.3 數(shù)據(jù)計(jì)算與處理 |
| 4.2 結(jié)果與分析 |
| 4.2.1 不同外植體誘導(dǎo)愈傷組織效果 |
| 4.2.2 不同部位愈傷誘導(dǎo)過程中內(nèi)源激素含量 |
| 4.2.3 不同部位愈傷誘導(dǎo)過程中內(nèi)源激素比值分析 |
| 4.3 討論 |
| 第五章 不同部位愈傷組織誘導(dǎo)過程中生理變化研究 |
| 5.1 試驗(yàn)材料與方法 |
| 5.1.1 試驗(yàn)材料 |
| 5.1.2 試驗(yàn)方法 |
| 5.2 結(jié)果與分析 |
| 5.2.1 不同部位愈傷誘導(dǎo)過程中抗氧化酶活性變化 |
| 5.2.2 愈傷誘導(dǎo)過程中可溶性蛋白含量的變化 |
| 5.2.3 愈傷組織誘導(dǎo)過程中可溶性糖含量的變化 |
| 5.2.4 不同外植體愈傷誘導(dǎo)過程中生理指標(biāo)相關(guān)性分析 |
| 5.3 討論 |
| 第六章 結(jié)論與展望 |
| 6.1 結(jié)論 |
| 6.2 討論 |
| 6.3 展望 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 附錄 |
| 在讀期間的學(xué)術(shù)研究 |
| 致謝 |
四、棗組培快繁技術(shù)及正交設(shè)計(jì)應(yīng)用試驗(yàn)（論文參考文獻(xiàn)）
- [1]金絲楸嫩枝扦插及組培快繁技術(shù)研究[D]. 徐慧. 山東農(nóng)業(yè)大學(xué), 2021
- [2]野生黃精離體快繁技術(shù)體系的優(yōu)化[J]. 曾文丹,曹升,尚小紅,陸柳英,肖亮,嚴(yán)華兵. 熱帶作物學(xué)報(bào), 2021(06)
- [3]黑果枸杞遺傳多樣性及快繁體系的初步研究[D]. 任重. 南京林業(yè)大學(xué), 2020(01)
- [4]兩種具有園林用途的野生植物組織培養(yǎng)與再生體系研究[D]. 趙培霞. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2020(02)
- [5]竹葉蘭繁育系統(tǒng)與快繁技術(shù)及其多倍體誘導(dǎo)研究[D]. 夏春英. 福建農(nóng)林大學(xué), 2019(04)
- [6]白芨組織培養(yǎng)及試管球莖膨大技術(shù)研究[D]. 黃穎融. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019(03)
- [7]楨楠組培技術(shù)研究[D]. 余云云. 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019(05)
- [8]‘紅雙喜’月季組織培養(yǎng)及其揮發(fā)油成分分析研究[D]. 劉子平. 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019(03)
- [9]百合科十二卷屬3種多肉植物組織培養(yǎng)體系的研究[D]. 賈博雅. 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué), 2019(03)
- [10]中國水仙離體再生體系的建立[D]. 錢廣藝. 中國林業(yè)科學(xué)研究院, 2019(03)
標(biāo)簽：白芨論文; 黑枸杞論文; 正交試驗(yàn)論文; 植物組培技術(shù)論文; 扦插繁殖論文;