一、百合頂芽離體誘導(dǎo)小鱗莖及開花球培育（論文文獻綜述）
韓淞名,孟慶雪,吳彥霏,閆凱麗,胡婉,樊金萍[1]（2021）在《兩種雄性不育百合組培快繁體系的建立》文中研究指明以2種花色、花型良好,長勢優(yōu)異的雄性不育百合‘5-4’與‘5-35’為試材,采用組織培養(yǎng)法,研究不同消毒時間、激素濃度及不同基質(zhì)配比對2種雄性不育百合組織培養(yǎng)過程中的影響,以期建立快速繁殖體系,為無花粉百合的大量生產(chǎn)提供參考依據(jù)。結(jié)果表明:最佳外植體滅菌方式為75%乙醇消毒20 s, 10%NaClO處理8 min,和75%乙醇消毒30 s, 10%NaClO處理6 min;最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+NAA 1.0 mg·L-1+6-BA 0.5 mg·L-1和MS+NAA 1.5 mg·L-1+6-BA 0.5 mg·L-1;最佳增殖培養(yǎng)基均為MS+6-BA 1.5 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1;最佳生根培養(yǎng)基為1/2MS+IBA 0.1 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+蔗糖40 g·L-1和1/2MS+IBA 0.2 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1+蔗糖40 g·L-1;最佳移栽基質(zhì)比例為蛭石∶珍珠巖∶草炭=1∶1∶1。
李慧琳[2]（2020）在《雜交百合后代微繁與促花研究》文中研究說明百合是重要的觀賞花卉,具有較高的觀賞和食用價值,國內(nèi)外對其進行了廣泛的雜交育種,通過雜交育種獲得的觀賞兼食用百合市場需求越來愈大。百合雜交育種的后代往往采用快速繁殖技術(shù)進行培育,通過組織培養(yǎng)獲得的組培子球具有休眠的問題,需進行低溫春化打破休眠才能進行正常的生長發(fā)育直至開花結(jié)果,一些外源物質(zhì)可以促進百合雜交后代開花。因而關(guān)于觀賞兼食用百合品種的微繁與促花研究直接關(guān)系到其能否產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)。本研究分別以蘭州百合與亞洲百合品種‘Trose’、蘭州百合（Lilium davidii var.unicolor Salisb）與亞洲百合品種‘Prunotto’雜交后代籽球為試驗材料,進行了組培快繁技術(shù)的探究、籽球低溫冷藏解除休眠技術(shù)探究及外源物質(zhì)對蘭州百合與亞洲百合雜交種‘Trose’的促進開花影響的這三部分研究,為百合雜種后代組培子球的產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)提供必要的技術(shù)支持。通過研究,獲得的主要結(jié)論如下:1.組織培養(yǎng)試驗結(jié)果表明:對于TR來說（1）啟動培養(yǎng)基為:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.30mg/L.（2）增殖培養(yǎng)基為:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L.（3）壯苗生根培養(yǎng)基為:1/2MS+NAA 0.3 mg/L+IBA 0.5 mg/L.（4）小鱗莖增大培養(yǎng)基:MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 1.0 mg/L+糖30g/L+瓊脂粉6g/L;對于PR來說（1）啟動培養(yǎng)基為:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L.（2）增殖培養(yǎng)基為:MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA0.5mg/L.（3）壯苗生根培養(yǎng)基為:1/2MS+NAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L.（4）小鱗莖增大培養(yǎng)基為:MS+NAA0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+糖30g/L+瓊脂粉6g/L。2.低溫打破休眠試驗結(jié)果表明:蘭州百合與亞洲百合品種‘Trose’、蘭州百合與亞洲百合品種‘Prunotto’雜交后代籽球在4℃冰箱內(nèi)冷藏均可有效解除休眠。TR品種需要35d解除休眠,PR品種需要42d解除休眠。在低溫冷藏期間,隨著冷藏時間的延長,鱗莖內(nèi)的可溶性糖含量積累,淀粉含量逐漸下降,內(nèi)源激素含量活躍變化、酚類物質(zhì)含量增加,3種酚類物質(zhì)酶活性發(fā)生改變,鱗莖休眠被打破。3.促花研究試驗結(jié)果表明:1.6%Ca Cl2溶液浸泡籽球10h是最利于TR的促花干預(yù)方法。且不同的施鈣濃度均能提高TR的開花品質(zhì)與花期,對鱗莖內(nèi)的內(nèi)源激素和碳水化合物產(chǎn)生明顯影響,其中IAA、GA3、可溶性糖以及淀粉對TR到花日數(shù)具有顯著的促進作用。
鄭鑫[3]（2017）在《亞洲百合無性繁殖小鱗莖技術(shù)的研究》文中研究指明百合（Lilium spp）是多年生球根草本花卉,系百合科（Liliaceae）、百合屬（Lilium）。百合花莖高挺,花大色艷,顏色各異,姿態(tài)優(yōu)雅,芳香宜人,而且生命力頑強具有豐富的藝術(shù)觀賞價值,常被人們視作純潔、光明和幸福的象征,又寓意著百年好合、幸福美滿,并且百合的球莖具有很高的食用、藥用價值還有美容等功效,從而使它在球根花卉中脫穎而出,是世界認(rèn)可的第五大切花。亞洲百合’普端頭’（Liliam asiatic Hybrids ’Prato’）是優(yōu)秀的栽培品種之一。花橙紅色,無香味,具有很強抗逆性,并且可以在東北地區(qū)露地越冬栽培。本實驗以亞洲百合普瑞頭的鱗片為實驗材料,探討了兩種無性繁殖方法的最適繁殖條件。以及在鱗片扦插繁殖過程中母鱗片與小鱗莖的碳水化合物代謝與小鱗莖的形成、生長、膨大的關(guān)系。并采用解剖學(xué)的方法探究亞洲百合普瑞頭鱗片在扦插繁殖過程中母鱗片和小鱗莖生長發(fā)育過程的形態(tài)變化,為百合種球工廠化生產(chǎn)提供理論參考和實踐指導(dǎo)。本研究主要得到的結(jié)果如下:（1）利用普瑞頭的外層鱗片、中層鱗片、內(nèi)層鱗片對比可知,外層鱗片扦插效果最好,生長率和小苗的生長強壯程度均高于鱗莖的內(nèi)層鱗片和中層鱗片。對百合鱗片的扦插基質(zhì),植物生長調(diào)節(jié)劑的用量,處理時間及鱗片的扦插部位進行了篩選,結(jié)果顯示,各個因素之間差異顯著,普瑞頭在Q10的處理下生長狀況最好,即扦插基質(zhì)為草炭土+蛭石（1:1）,植物生長調(diào)節(jié)劑為100mg/L6-BA+100mg/LIBA,處理的時間為3h,鱗片的部位為鱗片的下部。各因素的影響能力由強至弱依次為:鱗片的部位>植物生長調(diào)節(jié)劑的種類與濃度>處理時間>扦插的基質(zhì)。（2）利用普瑞頭百合的中、外層鱗片為外植體,最佳的滅菌時間為15 min,最適合誘導(dǎo)小鱗莖的培養(yǎng)基為:MS+1.5mg/L6-BA+0.2mg/LNAA,分化率為84%,產(chǎn)生不定芽的個數(shù)為148個。（3）在扦插過程中,母鱗片中碳水化合物整體呈下降趨勢;而在小鱗莖中呈現(xiàn)上升趨勢,在扦插初期（0-21 d）,說明小鱗莖的形成主要依靠消耗母鱗莖中的碳水化合物來為自身提供養(yǎng)分,同時也說明小鱗莖的形成是一個碳水化合物積累的過程。在扦插中期（21-41d）,母鱗片和小鱗莖中的碳水化合物的含量都呈相對穩(wěn)定的狀態(tài)。在扦插后期（42d以后）,母鱗片中的碳水化合物含量再一次大幅度下降,小鱗莖中碳水化合物的含量明顯上升,說明小鱗莖的膨大階發(fā)育同樣需要大量的消耗母鱗片的碳水化合物。（4）百合的小籽球萌發(fā)于近軸基部切口內(nèi)部10層左右的的薄壁細(xì)胞處。小籽球的萌發(fā)生長發(fā)生過程順次經(jīng)過了啟動時期、生長錐形成時期、葉原基形成時期和小鱗莖形成時期。
朱麗芳[4]（2014）在《老鴉瓣組織培養(yǎng)及試管鱗莖誘導(dǎo)技術(shù)研究》文中提出老鴉瓣（Tulipa edulis （Miq.） Baker）為百合科郁金香屬藥用植物,中藥材光慈姑（Bulbus tulipae）為其除去絨毛后的干燥鱗莖。光慈姑味甘,性寒,有毒；具有解毒散結(jié),行血化瘀之功效；主治咽喉腫痛,瘰疬,癰疽,瘡腫,產(chǎn)后瘀滯。隨著中藥產(chǎn)業(yè)對光慈姑需求量的不斷擴大,供需矛盾日益突出。目前光慈姑主要來源于野生,關(guān)于老鴉瓣及光慈姑各方面的研究內(nèi)容較少,人工栽培存在繁殖系數(shù)低下等問題。組織培養(yǎng)可在短期內(nèi)提供大量優(yōu)質(zhì)種苗,試管苗瓶內(nèi)結(jié)球可有效提高生產(chǎn)效率。通過對老鴉瓣鱗莖沙藏處理打破休眠,篩選適宜的外植體、植物生長物質(zhì)、培養(yǎng)條件,誘導(dǎo)出試管苗,并對試管苗進行試管鱗莖誘導(dǎo),建立起老鴉瓣組織培養(yǎng)及試管鱗莖誘導(dǎo)體系,得出如下結(jié)果：（1）老鴉瓣鱗莖在0-2℃低溫下沙藏120 d,以75%酒精浸泡30s和0.1% HgCl2浸泡12～15 min配合消毒或采用升汞連續(xù)二次消毒法（6+6）min,可在無激素MS培養(yǎng)基誘導(dǎo)產(chǎn)生芽莖（短縮芽莖）、鱗芽；升汞浸泡時間因鱗莖大小而異。誘導(dǎo)產(chǎn)生的芽莖（短縮芽莖）、鱗芽即可為初代外植體。（2）老鴉瓣芽莖（分為芽莖切段、芽莖頂端）和短縮芽莖較適宜誘導(dǎo)愈傷組織,而鱗芽較適合誘導(dǎo)不定芽；在MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA2.0 mg·L-1的培養(yǎng)基上,芽莖頂端愈傷誘導(dǎo)率為78.54%,短縮芽莖頂端的愈傷誘導(dǎo)率為85.46%,鱗芽在MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.01 mg·L-1的培養(yǎng)基中有較高的不定芽誘導(dǎo)率89.53%；適宜的愈傷組織增殖培養(yǎng)基為MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA2.0 mg·L-1;以黃白、質(zhì)密,表面光滑濕潤的團塊狀愈傷組織有利于芽分化,適宜的芽分化培養(yǎng)基為MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.2 mg·1/1,芽分化率為66.21%,平均芽數(shù)為1.73個。愈傷分化的叢生芽最適宜的增殖培養(yǎng)基為MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA0.2mg·L-1,增殖系數(shù)為2.48。（3）老鴉瓣冷藏芯芽及子莖（芽莖頂端膨大形成的子鱗莖）等器官為外植體,可直接誘導(dǎo)不定芽。子莖在MS+TDZ 2.0 mg·L-1+NAA 4.0 mg·L-1的培養(yǎng)基中直接誘導(dǎo)不定芽效果最好,不定芽得率為72.92%；芯芽誘導(dǎo)不定芽的適宜培養(yǎng)基為MS+TDZ 2.0 mg·L-1+NAA 2.0 mg·L-1;以子莖不定芽適宜的增殖培養(yǎng)為MS+TDZ 0.2 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1,叢生芽增殖系數(shù)達2.23。（4）老鴉瓣芽莖誘導(dǎo)的愈傷分化的叢生芽繼代增殖壯苗后即為無根試管苗,可誘導(dǎo)試管鱗莖。叢生芽必須經(jīng)歷低溫培養(yǎng)才能誘導(dǎo)出試管鱗莖。蔗糖、6-BA和大量元素濃度是影響試管鱗莖形成的主要因素,NAA對試管鱗莖誘導(dǎo)影響不顯著。芽叢（2-5個一簇）接入MS+6.BA0.1 mg·L-1+NAA0.01 mg·L-1+蔗糖80.0 g·L-1培養(yǎng)基后,低溫（5±1）℃培養(yǎng)60 d再轉(zhuǎn)入高溫（23±2）℃培養(yǎng),形成的試管鱗莖最多。培養(yǎng)基中添加多效唑,對試管鱗莖形成沒有明顯的促進作用。而培養(yǎng)基中添加水楊酸時,高濃度（3.0 mg·L-1）水楊酸可以促進試管鱗莖形成。試管鱗莖誘導(dǎo)高溫階段,以（23±2）℃、黑暗培養(yǎng)有利于其形成。
徐茜,余鴻燕,徐燕,黎華,廖采琴[5]（2014）在《重慶野生百合花蕾誘導(dǎo)再生植株技術(shù)研究》文中指出為了重慶野生百合資源的有效保護和開發(fā)利用,以重慶地區(qū)野生百合花蕾為試驗材料,采用植物組織誘導(dǎo)培養(yǎng)的方法對其再生植株技術(shù)進行了研究。結(jié)果表明:以即將開放的百合花蕾為外植體材料,消毒容易,無污染;通過對花蕾各器官（花冠、花托、花絲、花藥、花柱、柱頭、花梗）的誘導(dǎo)培養(yǎng),表明試驗所選的1號培養(yǎng)基MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L能誘導(dǎo)花冠、花托、花絲出芽,2號培養(yǎng)基MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L僅能誘導(dǎo)花冠出芽;幼芽增殖以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L的增殖系數(shù)最高,為3.2,增殖幼苗生長健壯;生根培養(yǎng)以14號培養(yǎng)基（MS+NAA 0.4 mg/L）誘導(dǎo)百合生根最佳,生根率為100%;移栽結(jié)果以18號培養(yǎng)基（MS+IBA 0.5 mg/L）的生根培養(yǎng)苗成活率較高,達到了85%。
黃敏玲,陳詩林,鐘淮欽[6]（2009）在《亞洲百合試管鱗莖誘導(dǎo)、開花球培育及促成栽培技術(shù)研究》文中提出以亞洲百合頂芽形成的叢芽體為材料,進行試管小鱗莖誘導(dǎo)及小鱗莖培育開花球研究。結(jié)果表明:激素、蔗糖、光照強度及低溫處理等因素影響小鱗莖誘導(dǎo),叢芽在MS+IBA 0.5 mg/L+4%蔗糖培養(yǎng)基上,光照強度1.5 klx培養(yǎng)30d后,小鱗莖誘導(dǎo)率100%,平均每株誘導(dǎo)小鱗莖1.5個,小鱗莖直徑0.96 cm;小鱗莖經(jīng)5℃低溫處理2周后再生形成的鱗莖,移栽后繼續(xù)生長2個月后才開始休眠。直徑0.8 cm以上的試管鱗莖,經(jīng)5～8℃低溫處理4周后,在福建省南平海拔800m處栽培8個月,收獲的種球中45.8%達到商品球標(biāo)準(zhǔn),開花性狀穩(wěn)定。以上述培育的商品球為材料,探討了赤霉素結(jié)合低溫處理和設(shè)施栽培對亞洲百合開花的影響。結(jié)果表明:低溫（5℃,56 d）冷藏處理結(jié)合設(shè)施栽培,花期提早82 d,開花率96.5%;赤霉素200mg/L處理加低溫冷藏,花期提早92d,開花率97.3%;低溫冷藏后用赤霉素200～300mg/L處理,可顯著提高花莖長度,但對花期沒有影響。設(shè)施栽培比對露地栽培花期提早31d,開花率98.5%。
周俊輝,周厚高,林麗嬋,盧俊圖[7]（2008）在《火百合花器的鱗莖誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)研究》文中研究指明采用4.5 ～6.5cm長、花苞青色未開放的火百合花蕾作材料,切取其子房、花柱、花絲為外植體進行鱗莖誘導(dǎo),結(jié)果表明:花絲的鱗莖誘導(dǎo)率最高,其次是花柱,子房的誘導(dǎo)率最低。以子房和花柱為外植體誘導(dǎo)出的鱗莖個體大小不一（1～7mm） ,以花絲為外植體誘導(dǎo)出的鱗莖則普遍偏小,但較整齊一致（3～4mm） ;小鱗莖誘導(dǎo)的最佳6-BA濃度是1.0mg/L。研究了基本培養(yǎng)基、6-BA濃度、NAA濃度對小鱗莖增殖的效應(yīng)及不同蔗糖濃度對小鱗莖增重的影響,結(jié)果表明:小鱗莖增殖的最佳培養(yǎng)基是:MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L,4 %蔗糖對鱗莖增重效果最好。
陳詩林,黃敏玲[8]（2007）在《低溫和赤霉素對亞洲百合開花及鱗莖繁殖的效應(yīng)》文中認(rèn)為以亞州百合為試材,探討了低溫冷藏、設(shè)施栽培和赤霉素結(jié)合低溫處理對亞洲百合開花及新球繁殖的效應(yīng)。結(jié)果表明:亞洲百合鱗莖在適宜溫度5℃下冷藏56 d,周徑12 cm以上的種球開花率達到95%以上;設(shè)施栽培（遮蔭、保溫及補光）比對照（露地栽培）花期提早31 d,開花率98.5%;低溫（5℃,56 d）冷藏處理結(jié)合設(shè)施栽培,花期提早82 d,開花率96.5%;赤霉素200 mg/L處理加低溫冷藏,花期提早92 d,比冷藏處理提早10 d,開花率97.3%;低溫冷藏后用赤霉素200300 mg/L處理,可顯著提高花莖長,但對花期沒有影響;低溫或低溫結(jié)合赤霉素處理,新球周徑比常規(guī)栽培顯著提高,而新球繁殖數(shù)顯著降低;二次開花顯著影響新球發(fā)育,籽球退化,需復(fù)壯栽培。
趙歡蕊,劉雅莉,王躍進[9]（2007）在《農(nóng)桿菌介導(dǎo)的普利安娜百合鱗莖直接分化受體系統(tǒng)的建立》文中指出以亞洲百合"普利安娜"為材料,通過不定芽誘導(dǎo)、植株再生及抗生素敏感性試驗,建立了百合直接分化受體系統(tǒng)。結(jié)果表明:鱗片和試管苗鱗片葉不定芽分化培養(yǎng)基均以MS+BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L為最佳;試管苗小葉柄分化不定芽培養(yǎng)基以MS+BA1.0 mg/L+NAA0.3 mg/L為宜;1/2MS+IBA0.5 mg/L+90 g Sucrose+暗培養(yǎng)1個月后再光照培養(yǎng)可誘導(dǎo)形成試管苗鱗莖;生根的適宜培養(yǎng)基為1/2MS+IBA0.5mg/L+0.1%活性炭;卡那霉素篩選濃度鱗片為150 mg/L,鱗片葉為100 mg/L。
趙歡蕊[10]（2007）在《農(nóng)桿菌介導(dǎo)的ACO基因RNA干擾表達載體轉(zhuǎn)化百合的研究》文中進行了進一步梳理亞洲系雜種百合是世界最主要的切花品種之一。但與東方百合相比亞洲百合花期更短,嚴(yán)重影響了它的觀賞價值和瓶插壽命,因此培育出花期較長的亞洲百合新品種顯得尤為迫切與重要。已有的研究結(jié)果表明:百合為乙烯釋放型花卉,百合花朵開放時,伴隨著乙烯的釋放而衰老。ACO是催化乙烯生成的最后一步關(guān)鍵酶,控制著乙烯的生成速率。因此,通過RNA干擾技術(shù)可使內(nèi)源的ACO基因轉(zhuǎn)錄的mRNA被降解,對ACO基因進行有效沉默,從而抑制乙烯生成,達到延長花期的目的。本研究以亞洲百合‘普利安娜’為試材,建立了直接分化受體系統(tǒng)和遺傳轉(zhuǎn)化體系,并通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)的ACO基因RNA干擾表達載體轉(zhuǎn)化亞洲百合,獲得轉(zhuǎn)化植株,為百合遺傳轉(zhuǎn)化提供依據(jù)。本研究取得的主要結(jié)果如下:1.建立了直接分化受體系統(tǒng)（1）鱗塊和鱗片葉不定芽分化最佳培養(yǎng)基均為MS+BA2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L;（2）小葉柄分化不定芽培養(yǎng)基以MS+BA1.0mg/L+NAA0.3mg/L為宜;（3）1/2MS+IBA0.5 mg/L +90g/L蔗糖+暗培養(yǎng)1個月后再光照培養(yǎng)可誘導(dǎo)試管苗鱗莖膨大;（4）生根的適宜培養(yǎng)基為1/2MS+IBA0.5 mg/L +0.1%活性炭;（5）卡那霉素抗性篩選結(jié)果表明:鱗塊以150 mg/L為宜,鱗片葉以100 mg/L為宜。2.建立了遺傳轉(zhuǎn)化體系（1）鱗片葉和鱗塊侵染最佳時間和濃度為:鱗片葉用OD600=0.3左右的菌液侵染8分鐘最好,鱗塊用OD600=0.8左右的菌液侵染30分鐘最好;（2）乙酰丁香酮能明顯提高百合轉(zhuǎn)化植株的再生頻率,MS重懸液和固體共培養(yǎng)基中均添加20 mg/L AS活化菌液2小時用于轉(zhuǎn)化可以提高抗性植株再生率。（3）不經(jīng)過預(yù)培養(yǎng)的鱗塊侵染后污染率最低,有利于百合鱗塊的轉(zhuǎn)化;（4）去除大量元素中的NH4NO3有利于農(nóng)桿菌的附著,使轉(zhuǎn)化率提高1倍。3.本研究獲得了106株卡那霉素抗性植株,并對其中55株進行了PCR檢測,獲得了4株P(guān)CR陽性植株。
二、百合頂芽離體誘導(dǎo)小鱗莖及開花球培育（論文開題報告）
（1）論文研究背景及目的
此處內(nèi)容要求：
首先簡單簡介論文所研究問題的基本概念和背景，再而簡單明了地指出論文所要研究解決的具體問題，并提出你的論文準(zhǔn)備的觀點或解決方法。
寫法范例：
本文主要提出一款精簡64位RISC處理器存儲管理單元結(jié)構(gòu)并詳細(xì)分析其設(shè)計過程。在該MMU結(jié)構(gòu)中,TLB采用叁個分離的TLB,TLB采用基于內(nèi)容查找的相聯(lián)存儲器并行查找,支持粗粒度為64KB和細(xì)粒度為4KB兩種頁面大小,采用多級分層頁表結(jié)構(gòu)映射地址空間,并詳細(xì)論述了四級頁表轉(zhuǎn)換過程,TLB結(jié)構(gòu)組織等。該MMU結(jié)構(gòu)將作為該處理器存儲系統(tǒng)實現(xiàn)的一個重要組成部分。
（2）本文研究方法
調(diào)查法：該方法是有目的、有系統(tǒng)的搜集有關(guān)研究對象的具體信息。
觀察法：用自己的感官和輔助工具直接觀察研究對象從而得到有關(guān)信息。
實驗法：通過主支變革、控制研究對象來發(fā)現(xiàn)與確認(rèn)事物間的因果關(guān)系。
文獻研究法：通過調(diào)查文獻來獲得資料，從而全面的、正確的了解掌握研究方法。
實證研究法：依據(jù)現(xiàn)有的科學(xué)理論和實踐的需要提出設(shè)計。
定性分析法：對研究對象進行“質(zhì)”的方面的研究，這個方法需要計算的數(shù)據(jù)較少。
定量分析法：通過具體的數(shù)字，使人們對研究對象的認(rèn)識進一步精確化。
跨學(xué)科研究法：運用多學(xué)科的理論、方法和成果從整體上對某一課題進行研究。
功能分析法：這是社會科學(xué)用來分析社會現(xiàn)象的一種方法，從某一功能出發(fā)研究多個方面的影響。
模擬法：通過創(chuàng)設(shè)一個與原型相似的模型來間接研究原型某種特性的一種形容方法。
三、百合頂芽離體誘導(dǎo)小鱗莖及開花球培育（論文提綱范文）
（1）兩種雄性不育百合組培快繁體系的建立（論文提綱范文）
| 1 材料與方法 |
| 1.1 試驗材料 |
| 1.2 試驗方法 |
| 1.2.1 培養(yǎng)條件 |
| 1.2.2 鱗片消毒滅菌 |
| 1.2.3 不定芽的誘導(dǎo)培養(yǎng) |
| 1.2.4 繼代增殖培養(yǎng) |
| 1.2.5 生根培養(yǎng) |
| 1.2.6 組培苗的馴化移栽 |
| 1.3 項目測定 |
| 1.4 數(shù)據(jù)分析 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 不同消毒組合對鱗片消毒效果的影響 |
| 2.2 不同激素濃度對不定芽誘導(dǎo)的影響 |
| 2.3 不同激素濃度對不定芽增殖的影響 |
| 2.4 不同激素濃度對不定芽生根的影響 |
| 2.5 不同基質(zhì)對生根苗馴化移栽的影響 |
| 3 討論與結(jié)論 |
（2）雜交百合后代微繁與促花研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 1.前言 |
| 1.1 引論 |
| 1.2 百合雜交育種 |
| 1.2.1 百合分類 |
| 1.2.2 蘭州百合與亞洲百合育種現(xiàn)狀 |
| 1.3 百合雜交后代組培快繁體系的建立 |
| 1.3.1 外植體對組織培養(yǎng)的影響 |
| 1.3.2 外植體滅菌處理 |
| 1.3.3 基本培養(yǎng)基及培養(yǎng)基添加成分的配比 |
| 1.4 百合低溫解除休眠的研究 |
| 1.4.1 冷藏期間碳水化合物的變化 |
| 1.4.2 冷藏期間內(nèi)源激素含量的變化 |
| 1.4.3 冷藏期間酚類物質(zhì)及其酶的含量變化 |
| 1.4.3.1 苯丙氨酸解氨酶(PAL)、多酚氧化酶(PPO)和過氧化物酶(POD)的研究進展 |
| 1.5 鈣對植物的影響 |
| 1.5.1 鈣對植物生長的影響 |
| 1.5.2 鈣對植物開花的影響 |
| 1.5.3 植物開花與內(nèi)源激素的關(guān)系 |
| 1.5.4 植物開花與內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)的關(guān)系 |
| 1.6 本研究的目的意義 |
| 1.7 技術(shù)路線 |
| 2.TR與PR無菌體系的建立 |
| 2.1 試驗材料 |
| 2.2 試驗方法 |
| 2.2.1 不同外植體初代誘導(dǎo)培養(yǎng)基的比較 |
| 2.2.2 以小鱗莖為外植體的啟動培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.2.3 以鱗片為外植體的啟動培養(yǎng)基激素配比篩選 |
| 2.2.4 增殖培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.2.5 生根壯苗培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.2.6 成球培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.3 結(jié)果與分析 |
| 2.3.1 不同外植體初代誘導(dǎo)培養(yǎng)基的比較 |
| 2.3.2 鱗莖作為外植體最適滅菌方法篩選 |
| 2.3.3 不同層次的鱗片誘導(dǎo)實驗 |
| 2.3.4 鱗片不同接種方式的叢生芽誘導(dǎo) |
| 2.3.5 鱗片作為外植體的啟動培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.3.6 增殖培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.3.7 無機鹽、生長素水平對生根壯苗的影響 |
| 2.3.8 小鱗莖增大培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.4 討論與結(jié)論 |
| 2.4.1 外植體對無菌體系建立的影響 |
| 2.4.2 不同激素配比在組織培養(yǎng)生長過程中的影響 |
| 3.TR與PR最佳低溫春化時間 |
| 3.1 試驗材料 |
| 3.2 試驗方法 |
| 3.2.1 碳水化合物含量的測定 |
| 3.2.2 內(nèi)源激素含量測定 |
| 3.2.3 酚類物質(zhì)及其酶活性的變化 |
| 3.3 結(jié)果與分析 |
| 3.3.1 碳水化合物含量的測定 |
| 3.3.2 低溫處理下內(nèi)源激素含量的變化 |
| 3.3.3 不同低溫處理時間碳水化合物與內(nèi)源激素及酚類物質(zhì)的相關(guān)性分析 |
| 3.3.4 不同低溫處理時間酚類物質(zhì)及其酶的相關(guān)性分析 |
| 3.4 討論與總結(jié) |
| 3.4.1 可溶性糖和淀粉含量對低溫春化的影響 |
| 3.4.2 生長促進素和生長抑制素含量對低溫春化的影響 |
| 3.4.3 總酚含量對低溫春化的影響 |
| 4.TR促花研究 |
| 4.1 試驗材料 |
| 4.2 試驗方法 |
| 4.2.1 各花期百合開花品質(zhì) |
| 4.2.2 開花花期的影響 |
| 4.2.3 內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)的測定 |
| 4.2.4 內(nèi)源激素的測定 |
| 4.3 結(jié)果與分析 |
| 4.3.1 不同Ca~(2+)水平對TR開花品質(zhì)的影響 |
| 4.3.2 不同Ca~(2+)水平對TR花期的影響 |
| 4.3.3 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源激素IAA含量的影響 |
| 4.3.4 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源激素GA_3含量的影響 |
| 4.3.5 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源激素ABA含量的影響 |
| 4.3.6 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源激素ZR含量的影響 |
| 4.3.7 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源激素比值的影響 |
| 4.3.8 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)可溶性糖含量的影響 |
| 4.3.9 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)淀粉含量的影響 |
| 4.3.10 不同Ca~(2+)水平對TR內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)可溶性蛋白質(zhì)含量的影響 |
| 4.3.11 不同因素與到花日數(shù)相關(guān)性分析 |
| 4.4 討論 |
| 4.4.1 TR促花過程中開花品質(zhì)與花期的變化 |
| 4.4.2 TR促花過程中內(nèi)源激素的變化 |
| 4.4.3 TR促花過程中內(nèi)源營養(yǎng)物質(zhì)的變化 |
| 5 結(jié)論與展望 |
| 5.1 結(jié)論 |
| 5.2 本研究創(chuàng)新點 |
| 5.3 展望 |
| 參考文獻 |
| 縮略語表 |
| 本人簡介 |
| 導(dǎo)師簡介 |
| 致謝 |
（3）亞洲百合無性繁殖小鱗莖技術(shù)的研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| 英文摘要 |
| 1 引言 |
| 1.1 研究目的與意義 |
| 1.2 我國百合種球的生產(chǎn)現(xiàn)狀 |
| 1.3 百合種球繁殖的研究進展 |
| 1.3.1 百合的繁殖方法 |
| 1.3.2 百合鱗片組織培養(yǎng)的研究進展 |
| 1.3.3 百合鱗片扦插繁殖的研究進展 |
| 1.3.4 百合碳水化合物含量研究進展 |
| 1.3.5 百合小鱗莖發(fā)育過程的研究進展 |
| 1.4 技術(shù)路線 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 實驗藥品 |
| 2.1.3 實驗器材 |
| 2.1.4 實驗條件 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 百合鱗片扦插繁殖 |
| 2.2.2 百合鱗片的組織培養(yǎng)繁殖 |
| 2.2.3 百合生理指標(biāo)檢測 |
| 2.2.4 小鱗莖發(fā)育過程中細(xì)胞學(xué)觀察 |
| 2.3 數(shù)據(jù)處理與分析 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 百合的扦插 |
| 3.1.1 百合鱗片的不同部位對小鱗莖誘導(dǎo)分化的影響 |
| 3.1.2 四種因素對百合鱗莖誘導(dǎo)分化的影響 |
| 3.2 百合的組織培養(yǎng) |
| 3.2.1 不同滅菌時間對百合鱗莖誘導(dǎo)分化的影響 |
| 3.2.2 不同激素濃度配比對百合誘導(dǎo)分化的實驗結(jié)果 |
| 3.3 小鱗莖生長過程中碳水化合物的變化 |
| 3.3.1 蔗糖含量的測定 |
| 3.3.2 可溶性糖含量的測定 |
| 3.3.3 淀粉含量的測定 |
| 3.4 小鱗莖形成過程組織學(xué)觀察 |
| 3.4.1 扦插過程中小鱗莖的外部形態(tài)發(fā)生變化 |
| 3.4.2 小鱗莖的組織形態(tài)發(fā)生過程 |
| 4 討論 |
| 4.1 扦插基質(zhì)的選擇對鱗片扦插的影響 |
| 4.2 百合種球的預(yù)處理對鱗片扦插的影響 |
| 4.3 引起百合鱗莖污染率高原因 |
| 4.3.1 扦插繁殖中鱗片污染的原因 |
| 4.3.2 組織培養(yǎng)中鱗片污染的原因 |
| 4.4 植物生長調(diào)節(jié)劑配比對不同基因型百合生長的影響 |
| 4.5 小鱗莖生長過程中碳水化合物的變化 |
| 4.6 小鱗莖的生長過程中形態(tài)學(xué)的變化 |
| 4.7 不同部位的鱗片對誘導(dǎo)小鱗莖的影響 |
| 5 結(jié)論 |
| 致謝 |
| 參考文獻 |
| 附錄 |
| 攻讀碩士學(xué)位期間發(fā)表的學(xué)術(shù)論文 |
（4）老鴉瓣組織培養(yǎng)及試管鱗莖誘導(dǎo)技術(shù)研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 符號及縮略語說明 |
| 第一章 文獻綜述 |
| 1 百合科植物離體培養(yǎng)植株再生途徑研究 |
| 1.1 百合科植物離體培養(yǎng)研究概況 |
| 1.2 百合科植物植株再生途徑研究進展 |
| 2 試管鱗莖研究進展 |
| 2.1 試管鱗莖的誘導(dǎo)途徑研究 |
| 2.2 試管鱗莖誘導(dǎo)途徑的影響因素 |
| 2.3 試管鱗莖形成、膨大影響因素 |
| 2.4 試管鱗莖休眠 |
| 2.5 試管鱗莖生根及移栽 |
| 3 老鴉瓣與光慈姑研究綜述 |
| 3.1 老鴉瓣與光慈姑概述 |
| 3.2 老鴉瓣本草考證及系統(tǒng)分類研究 |
| 3.3 老鴉瓣栽培生理及生物學(xué)特性研究 |
| 3.4 老鴉瓣化學(xué)成分及藥理學(xué)研究 |
| 3.5 老鴉瓣組織培養(yǎng)研究 |
| 4 研究目的及意義 |
| 第二章 老鴉瓣外植體消毒和無菌培養(yǎng)物建立 |
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 不同溫度處理對老鴉瓣鱗莖的影響 |
| 2.2 外植體消毒 |
| 3 討論 |
| 3.1 鱗莖預(yù)處理和取材時期對外植體活力的影響 |
| 3.2 外植體消毒方法 |
| 3.3 抗生素在外植體消毒上的應(yīng)用 |
| 第三章 老鴉瓣芽莖誘導(dǎo)愈傷組織分化叢生芽 |
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 愈傷組織的誘導(dǎo) |
| 2.2 不同芽莖部位誘導(dǎo)愈傷組織效果比較 |
| 2.3 愈傷組織增殖 |
| 2.4 愈傷組織分化不定芽 |
| 2.5 不同愈傷組織類型分化不定芽效果比較 |
| 2.6 芽莖愈傷組織途徑的叢生芽增殖 |
| 3 結(jié)論與討論 |
| 3.1 外植體類型對初代誘導(dǎo)結(jié)果的影響 |
| 3.2 激素配比對愈傷組織誘導(dǎo)分化的影響 |
| 3.3 影響愈傷組織誘導(dǎo)及生長的其他因素 |
| 第四章 老鴉瓣子莖誘導(dǎo)不定芽及叢生芽增殖 |
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 外植體直接誘導(dǎo)不定芽 |
| 2.2 芯芽外植體直接誘導(dǎo)不定芽 |
| 2.3 子莖不定芽增殖 |
| 2.4 生根誘導(dǎo) |
| 3 討論 |
| 3.1 TDZ在植物組織培養(yǎng)中的應(yīng)用 |
| 3.2 不同外植體直接誘導(dǎo)芽效果比較 |
| 第五章 老鴉瓣試管鱗莖誘導(dǎo) |
| 1 材料和方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 低溫處理對老鴉瓣試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 2.2 老鴉瓣試管鱗莖誘導(dǎo)培養(yǎng)基的篩選 |
| 2.3 不同濃度多效挫（PP333)對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 2.4 不同濃度水楊酸(SA)對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 2.5 不同高溫溫度對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 2.6 光照處理對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 2.7 試管鱗莖移栽萌發(fā) |
| 3 討論 |
| 3.1 試管鱗莖誘導(dǎo)途徑探討 |
| 3.2 激素和培養(yǎng)基成分對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 3.3 培養(yǎng)條件對試管鱗莖誘導(dǎo)的影響 |
| 全文結(jié)論與創(chuàng)新點 |
| 1 全文結(jié)論 |
| 2 創(chuàng)新之處 |
| 參考文獻 |
| 附錄 |
| 攻讀碩士學(xué)位期間發(fā)表論文及申請專利 |
| 致謝 |
（5）重慶野生百合花蕾誘導(dǎo)再生植株技術(shù)研究（論文提綱范文）
| 0 引言 |
| 1 材料與方法 |
| 1.1 試驗時間、地點 |
| 1.2 試驗材料 |
| 1.3 試驗方法 |
| 1.4 生根苗移栽 |
| 2結(jié)果與分析 |
| 2.1污染情況 |
| 2.2 誘導(dǎo)培養(yǎng) |
| 2.3 增殖培養(yǎng) |
| 2.4 生根培養(yǎng) |
| 2.5 移栽試驗 |
| 3 結(jié)論 |
| 4 討論 |
（8）低溫和赤霉素對亞洲百合開花及鱗莖繁殖的效應(yīng)（論文提綱范文）
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 試驗設(shè)計 |
| 1.2.1 鱗莖不同冷藏溫度處理 |
| 1.2.2 鱗莖不同冷藏時間處理 |
| 1.2.3 不同大小鱗莖冷藏處理 |
| 1.2.4 設(shè)施栽培處理 |
| 1.2.5 赤霉素+低溫處理 |
| 1.3 栽培措施與觀察指標(biāo) |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 亞洲百合生物學(xué)特性觀察 |
| 2.2 鱗莖低溫處理對開花的影響 |
| 2.3 鱗莖低溫處理時間對開花的影響 |
| 2.4 鱗莖大小對開花的影響 |
| 2.5 設(shè)施栽培對百合開花的效應(yīng) |
| 2.6 赤霉素與低溫處理對百合開花及新球發(fā)育的影響 |
| 2.7 赤霉素與低溫處理對二次開花及新球發(fā)育的影響 |
| 3 討 論 |
（9）農(nóng)桿菌介導(dǎo)的普利安娜百合鱗莖直接分化受體系統(tǒng)的建立（論文提綱范文）
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 外植體滅菌處理 |
| 1.3 鱗片離體再生 |
| 1.4 鱗片不同部位切塊不定芽誘導(dǎo) |
| 1.5 小葉離體再生 |
| 1.6 試管苗鱗莖誘導(dǎo) |
| 1.7 卡那霉素 (Km) 抗性篩選 |
| 1.7.1 試管苗鱗片葉卡那霉素抗性篩選 |
| 1.7.2 鱗片卡那霉素抗性篩選 |
| 1.8 生根培養(yǎng) |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 影響鱗片不定芽分化的因素 |
| 2.1.1 不同激素組合對鱗片不定芽誘導(dǎo)的影響 |
| 2.1.2 鱗片不同部位對不定芽分化的影響 |
| 2.2 小葉不定芽的分化 |
| 2.3 試管苗鱗莖誘導(dǎo) |
| 2.4 卡那霉素抗性篩選 |
| 2.5 生根培養(yǎng) |
| 3 討 論 |
（10）農(nóng)桿菌介導(dǎo)的ACO基因RNA干擾表達載體轉(zhuǎn)化百合的研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文獻綜述 |
| 1.1 轉(zhuǎn)基因植物的概念 |
| 1.2 轉(zhuǎn)基因技術(shù)改良的園藝性狀 |
| 1.2.1 改變花色 |
| 1.2.2 控制花型 |
| 1.2.3 調(diào)控花期 |
| 1.2.4 花香改良 |
| 1.2.5 控制切花衰老 |
| 1.2.6 花卉抗性基因工程 |
| 1.2.7 花卉基因工程存在的問題及展望 |
| 1.3 觀賞植物遺傳改良中常用的轉(zhuǎn)基因方法 |
| 1.3.1 農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化法 |
| 1.3.2 基因槍法 |
| 1.3.3 其他轉(zhuǎn)化法 |
| 1.4 乙烯生物合成基因工程 |
| 1.4.1 乙烯生物合成途徑 |
| 1.4.2 乙烯與切花衰老 |
| 1.4.3 與乙烯有關(guān)的基因工程 |
| 1.5 RNA 干擾技術(shù)及其在植物中的應(yīng)用研究 |
| 1.5.1 RNAi 的定義 |
| 1.5.2 RNAi 現(xiàn)象的發(fā)現(xiàn) |
| 1.5.3 RNAi 的作用機制 |
| 1.5.4 RNAi 的特征 |
| 1.5.5 RNAi 在植物中的應(yīng)用研究 |
| 1.6 百合轉(zhuǎn)基因研究進展 |
| 1.6.1 百合遺傳轉(zhuǎn)化體系建立 |
| 1.6.2 百合遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù) |
| 1.7 本研究的目的及意義 |
| 第二章 亞洲百合鱗莖直接分化受體系統(tǒng)建立 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 試驗方法 |
| 2.2 結(jié)果與分析 |
| 2.2.1 不同激素組合對不定芽分化的影響 |
| 2.2.2 外植體部位對不定芽分化的影響 |
| 2.2.3 試管苗鱗莖誘導(dǎo) |
| 2.2.4 生根培養(yǎng) |
| 2.2.5 卡那霉素敏感性試驗 |
| 第三章 亞洲百合鱗塊遺傳轉(zhuǎn)化 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 植物材料 |
| 3.1.2 農(nóng)桿菌菌株及載體 |
| 3.1.3 培養(yǎng)基 |
| 3.1.4 試劑及儀器 |
| 3.1.5 緩沖液配制 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 利用凍融法將植物表達載體導(dǎo)入農(nóng)桿菌 |
| 3.2.2 轉(zhuǎn)化方法 |
| 3.2.3 鱗片葉的轉(zhuǎn)化 |
| 3.2.4 影響鱗塊轉(zhuǎn)化的因素 |
| 3.2.5 轉(zhuǎn)基因植株檢測 |
| 3.3 結(jié)果與分析 |
| 3.3.1 根癌農(nóng)桿菌的轉(zhuǎn)化及鑒定 |
| 3.3.2 鱗片葉的轉(zhuǎn)化 |
| 3.3.3 鱗塊的轉(zhuǎn)化 |
| 3.3.4 亞洲百合基因組DNA 的提取 |
| 3.3.5 PCR 檢測 |
| 第四章 討論 |
| 4.1 亞洲百合鱗莖直接分化受體系統(tǒng)建立 |
| 4.1.1 轉(zhuǎn)化途徑 |
| 4.1.2 外植體取材部位對不定芽分化的影響 |
| 4.1.3 不同轉(zhuǎn)化受體對不定芽分化的影響 |
| 4.1.4 卡那霉素敏感性試驗 |
| 4.2 影響農(nóng)桿菌介導(dǎo)百合遺傳轉(zhuǎn)化的因素 |
| 4.2.1 不同轉(zhuǎn)化受體對百合轉(zhuǎn)化的影響 |
| 4.2.2 酚類化合物（AS）的加入對百合轉(zhuǎn)化效率的影響 |
| 4.2.3 不同菌液濃度及侵染時間對百合基因轉(zhuǎn)化的影響 |
| 4.2.4 NH_4NO_3 濃度對百合轉(zhuǎn)化的影響 |
| 第五章 結(jié)論 |
| 5.1 建立了亞洲百合‘普利安娜’直接分化受體系統(tǒng) |
| 5.2 建立了亞洲百合‘普利安娜’遺傳轉(zhuǎn)化體系 |
| 5.3 獲得抗性植株及轉(zhuǎn)基因植株 |
| 參考文獻 |
| 附錄 |
| 英文縮略詞 |
| 致謝 |
| 作者簡介 |
四、百合頂芽離體誘導(dǎo)小鱗莖及開花球培育（論文參考文獻）
- [1]兩種雄性不育百合組培快繁體系的建立[J]. 韓淞名,孟慶雪,吳彥霏,閆凱麗,胡婉,樊金萍. 北方園藝, 2021(20)
- [2]雜交百合后代微繁與促花研究[D]. 李慧琳. 北京林業(yè)大學(xué), 2020(06)
- [3]亞洲百合無性繁殖小鱗莖技術(shù)的研究[D]. 鄭鑫. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué), 2017(07)
- [4]老鴉瓣組織培養(yǎng)及試管鱗莖誘導(dǎo)技術(shù)研究[D]. 朱麗芳. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2014(08)
- [5]重慶野生百合花蕾誘導(dǎo)再生植株技術(shù)研究[J]. 徐茜,余鴻燕,徐燕,黎華,廖采琴. 中國農(nóng)學(xué)通報, 2014(07)
- [6]亞洲百合試管鱗莖誘導(dǎo)、開花球培育及促成栽培技術(shù)研究[A]. 黃敏玲,陳詩林,鐘淮欽. 2009中國球根花卉年會交流論文集, 2009
- [7]火百合花器的鱗莖誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)研究[J]. 周俊輝,周厚高,林麗嬋,盧俊圖. 廣西植物, 2008(06)
- [8]低溫和赤霉素對亞洲百合開花及鱗莖繁殖的效應(yīng)[J]. 陳詩林,黃敏玲. 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2007(05)
- [9]農(nóng)桿菌介導(dǎo)的普利安娜百合鱗莖直接分化受體系統(tǒng)的建立[J]. 趙歡蕊,劉雅莉,王躍進. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2007(04)
- [10]農(nóng)桿菌介導(dǎo)的ACO基因RNA干擾表達載體轉(zhuǎn)化百合的研究[D]. 趙歡蕊. 西北農(nóng)林科技大學(xué), 2007(06)
標(biāo)簽：固體培養(yǎng)基論文; 百合論文; 鱗片論文; 激素論文; ms培養(yǎng)基論文;