一、怎樣鑒別平菇菌種的優(yōu)劣(論文文獻(xiàn)綜述)
向巧[1](2021)在《滑菇次級代謝產(chǎn)物的挖掘》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理高等真菌是抗生素以及農(nóng)藥的先導(dǎo)化合物的重要來源之一,它里面含有的化合物具有結(jié)構(gòu)新穎、活性顯著等特點(diǎn)。滑菇(Pholiota nameko),屬于擔(dān)子菌門、層菌綱、傘菌目、球蓋菇科、鱗傘屬,又名光帽黃傘、滑子菇?;骄哂胁牧蟻碓磸V、菌種可以被分離培養(yǎng)等優(yōu)點(diǎn)。本文以高等真菌滑菇(Pholiota nameko)為研究對象。文獻(xiàn)報(bào)道滑菇浸膏、多糖、蛋白等還具有增強(qiáng)機(jī)體免疫、抗氧化、抗炎、抗腫瘤等多種藥理作用。通過本課題組其他成員前期對滑菇的研究發(fā)現(xiàn)滑菇屬于敏感類真菌即改變它的發(fā)酵條件則可誘導(dǎo)其產(chǎn)生不同的次級代謝產(chǎn)物,并且滑菇發(fā)酵液中含有不同化學(xué)結(jié)構(gòu)類型且活性顯著的化學(xué)成分。為了充分發(fā)掘其產(chǎn)生次級代謝產(chǎn)物的潛力,探索其產(chǎn)生次級代謝產(chǎn)物所發(fā)的機(jī)制,我們從化學(xué)成分、代謝組學(xué)以及轉(zhuǎn)錄組學(xué)三方面對滑菇次級代謝產(chǎn)物進(jìn)行了深入挖掘,以期從中獲得大量結(jié)構(gòu)新穎、活性顯著的次級代謝產(chǎn)物。(1)通過多種分離純化手段,對不同發(fā)酵條件下得到的滑菇乙酸乙酯層浸膏進(jìn)行化學(xué)成分的分離純化及結(jié)構(gòu)鑒定:(1)發(fā)酵條件:每升滅菌水含去皮土豆200 g,葡萄糖20 g,Mg SO4 1.5 g,KH2PO43g,VB1 10 mg,蛋白胨1.0g,用檸檬酸調(diào)p H至6.0~6.5。培養(yǎng)條件:24℃恒溫,轉(zhuǎn)速150 r/min,暗培養(yǎng)發(fā)酵25天。得到乙酸乙酯層浸膏27g,并從中分離鑒定出了一個(gè)新化合物:1-hydroxy-6-bromo-2,2,5,7-tetramethylindan。(2)發(fā)酵條件:大米和水(1:1.4),培養(yǎng)條件:室溫靜置,發(fā)酵45天。得到的滑菇發(fā)酵液的乙酸乙酯層浸膏62.1g,從中分離并鑒定出了5個(gè)化合物,它們分別是:(22E,24R)-Ergosta-7,22-dien-3β-ol(1)、(22E,24R)-5α,8α-Epidioxy-ergosta-6,22-dien-3β-ol(2)、β-Sitosterin(3)、(22E,24R)-ergosta-4,6,8(14),22-tetraen-3-one(4)、22E,24R)-Ergosta-4,6,8(14),22-tetraen-3-one(5)。(3)發(fā)酵條件:每升超純水中加入葡萄糖5.00%、酵母粉0.50%、蛋白胨0.15%、Mg SO4和KH2PO40.05%,培養(yǎng)條件:24℃、150 r/min,搖床暗培養(yǎng)25-30天。得到乙酸乙酯層浸膏36g,從中分離鑒定出了4個(gè)已知化合物,它們分別為:Donacinol B(6)、Donacinol C(7)、Trichapargins A(8)、Trichapargins B(9)。(4)對從滑菇發(fā)酵液中分離出的單體化合物進(jìn)行了初步的胰島素的敏感性和降血糖活性研究。通過細(xì)胞實(shí)驗(yàn),結(jié)果顯示化合物8在10μM濃度下單獨(dú)作用24小時(shí)后表現(xiàn)有一定活性;化合物7、化合物6、化合物9在10μM濃度下單作用24小時(shí)后表現(xiàn)無活性。(2)由于實(shí)驗(yàn)室的培養(yǎng)條件以及分離純化手段的局限性,就使得我們想要從滑菇發(fā)酵液中分離得到那些本身含量就不多但化學(xué)結(jié)構(gòu)新穎的化合物增加了困難。LC與高選擇性、高靈敏度的MS/MS相結(jié)合,可對復(fù)雜樣品進(jìn)行實(shí)時(shí)分析,超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)能夠準(zhǔn)確定性定量。代謝組學(xué)分析主要目的是從生物樣本中檢測并篩選出具有重要生物學(xué)意義和統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著差異的代謝物,并以此為基礎(chǔ)闡明生物體的代謝過程和變化機(jī)制。運(yùn)用LC-MS/MS技術(shù)對滑菇在不同培養(yǎng)條件下的發(fā)酵液產(chǎn)生的次級代謝產(chǎn)物進(jìn)行了定性定量分析。結(jié)果表明:從混合的樣品中總共檢測出七種類型的次級代謝產(chǎn)物,總共為342種代謝物。其中與我們比較感興趣的的類型有:萜類(9種)、香豆素(15種)、其他類(64種)。對每組樣品分別進(jìn)行兩兩比對,篩選出它們兩組間的不同差異代謝物,它們各組間依次篩選出的不同差異代謝物數(shù)目分別:231、211、230、199、133、211。通過對各組間篩選得出的差別性代謝物進(jìn)行了分析,結(jié)果可以發(fā)現(xiàn)土豆配養(yǎng)基3中的代謝物含量最豐富,GP培養(yǎng)基的含量最差。并對它們兩個(gè)間的差異代謝物進(jìn)行了代謝通路分析。通過KEGG代謝途徑分析,發(fā)現(xiàn)差異代謝物富集用于63條通路途徑,其中與我們研究相關(guān)的通路途徑有兩條,它們?yōu)?代謝途徑和次生代謝產(chǎn)物的生物合成,它們富集的差異代謝物的數(shù)目最多,分別為80、35個(gè)。(3)運(yùn)用轉(zhuǎn)錄組測序?qū)Σ煌囵B(yǎng)條件下滑菇發(fā)酵液菌絲體次級代謝產(chǎn)物進(jìn)行深入研究,探索滑菇在不同發(fā)酵條件下產(chǎn)生不同次級代謝產(chǎn)物的發(fā)生機(jī)制,為進(jìn)一步的開發(fā)利用滑菇提供了理論基礎(chǔ)。對不同培養(yǎng)條件下滑菇菌絲體進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序分析,初步篩選出與次級代謝產(chǎn)物相關(guān)的差異基因:結(jié)果表明:將15480條Unigene序列通過Blast軟件與公共數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對,從中獲得注釋的Unigene有10900個(gè)。對各組間的差異基因的進(jìn)行了篩選,發(fā)現(xiàn)GP培養(yǎng)基vs大米培養(yǎng)基篩選出的差異基因數(shù)最多為:2450個(gè),GP培養(yǎng)基vs土豆培養(yǎng)基篩選出的差異基因數(shù)最少為:1020個(gè)。通過差異基因GO富集分析結(jié)果可以明確滑菇發(fā)酵液菌絲體在不同培養(yǎng)條件下的細(xì)胞組分、生物學(xué)過程和分子功能三大分類中的差異表達(dá)基因。最后對差異表達(dá)基因進(jìn)行KEGG富集分析,確定了差異表達(dá)基因的顯著富集通路,同時(shí)找出了差異表達(dá)基因參與的滑菇次級代謝產(chǎn)物有關(guān)通路途徑,并在KEGG數(shù)據(jù)庫中找到了與次級代謝產(chǎn)物有關(guān)通路所富集的基因數(shù)以及基因名。
史靈燕[2](2019)在《不同黑木耳品種種質(zhì)鑒定及優(yōu)良菌株篩選研究》文中認(rèn)為食用菌市場菌種混亂問題日益嚴(yán)重,同物異名現(xiàn)象在黑木耳菌種市場屢見不鮮。本研究以24株北方地區(qū)主栽黑木耳菌株為試驗(yàn)材料,通過拮抗試驗(yàn),酯酶同工酶測定、ISSR分子標(biāo)記技術(shù)和SRAP分子標(biāo)記技術(shù),對黑木耳菌株進(jìn)行多相分類鑒定,確定其親緣關(guān)系遠(yuǎn)近,進(jìn)一步結(jié)合栽培試驗(yàn),對不同黑木耳品種進(jìn)行品比試驗(yàn),篩選出適宜于北部山區(qū)栽培的黑木耳優(yōu)良菌株。本研究試驗(yàn)結(jié)果如下:1.通過對供試栽培黑木耳菌株的拮抗試驗(yàn)結(jié)果表明,24個(gè)菌株的拮抗反應(yīng)表現(xiàn)為隆起型、溝壑型和無拮抗反應(yīng)3種情況。其中Aaj4,Aaj6,Aaj7,Aaj12,Aaj20,Aaj24,這六個(gè)菌株與其他菌株間的拮抗反應(yīng)均表現(xiàn)為隆起型,從培養(yǎng)皿背部觀察有褐色色素的分泌;這六個(gè)菌株之間菌絲平鋪到一起,無拮抗反應(yīng);其他菌株之間部分存在溝壑型反應(yīng),部分無拮抗反應(yīng),從培養(yǎng)皿背部觀察無色素分泌。2.使用酯酶同工酶技術(shù)鑒定24株黑木耳菌株遺傳多樣性的試驗(yàn)結(jié)果表明,24種黑木耳菌株共擴(kuò)增出11種遷移率不同的酶帶,且聚類分析結(jié)果表明,當(dāng)遺傳系數(shù)為0.73時(shí),可將24個(gè)黑木耳菌株分為兩大類群,與拮抗試驗(yàn)結(jié)果吻合度較高。3.利用SRAP分子標(biāo)記技術(shù),對24個(gè)供試栽培黑木耳菌株進(jìn)行遺傳多樣性分析試驗(yàn)中,以24株菌株基因組DNA為模板的擴(kuò)增片段分子量在100-2 000 bp間總共擴(kuò)增出133條多態(tài)性條帶,平均每個(gè)引物擴(kuò)增出6條多態(tài)性條帶,聚類分析結(jié)果表明:遺傳相似系數(shù)變化范圍為0.56-1.0,在遺傳相似系數(shù)為0.56時(shí),可將24株黑木耳菌株劃分為兩大類群,聚類分析結(jié)果與拮抗試驗(yàn)結(jié)果、酯酶同工酶測定結(jié)果基本一致。4.通過ISSR分子標(biāo)記對24個(gè)供試栽培黑木耳菌株基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,共擴(kuò)增出67條清晰的DNA多態(tài)片段,大小介于0.2-2 kb,對擴(kuò)增條帶進(jìn)行統(tǒng)計(jì),聚類分析結(jié)果表明:遺傳相似系數(shù)變化范圍為0.74-1.0,當(dāng)遺傳系數(shù)為0.85時(shí),可將24個(gè)菌株分為兩大類,其聚類分析結(jié)果與前三種鑒定方法的結(jié)果基本一致,為今后黑木耳的分類鑒定及遺傳育種親本的選配提供了理論依據(jù)。最終,篩選出19株黑木耳生產(chǎn)菌株為代表菌株,進(jìn)行品比試驗(yàn)。用十字交叉法測定了不同菌株的母種菌絲生長速度和長勢,同時(shí)在北部山區(qū)阜平地區(qū)采用吊袋栽培法測定了不同菌株的農(nóng)藝性狀、抗雜能力和產(chǎn)量,結(jié)果表明,菌株野森一代、黑丹一代、黑山、黑耳厚4等個(gè)菌株,在產(chǎn)量、出芽時(shí)期、出芽整齊度、耳片形狀等方面均表現(xiàn)優(yōu)異,適宜作為北部山區(qū)主栽品種。本研究為黑木耳遺傳育種及生產(chǎn)上黑木耳菌株的選擇提供了科學(xué)依據(jù)。
李云夢[3](2018)在《平菇菌株提純復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用效果研究》文中提出本試驗(yàn)以平菇“99”菌株為試驗(yàn)材料,采用組織分離、尖端分離、原生質(zhì)體再生技術(shù)分別進(jìn)行提純復(fù)壯技術(shù)的應(yīng)用效果進(jìn)行研究,試驗(yàn)共獲得59個(gè)分離菌株,經(jīng)過初步篩選得到19個(gè)優(yōu)勢菌株;進(jìn)一步對19個(gè)優(yōu)勢菌株進(jìn)行生理、生化、真實(shí)性及農(nóng)藝性狀等檢測,獲得了性狀優(yōu)良的提純復(fù)壯菌株11個(gè),主要研究結(jié)果如下:(1)利用組織分離技術(shù)獲得4個(gè)菌株,菌絲長速、漆酶活性等性狀測定結(jié)果表明,4個(gè)復(fù)壯菌株在漆酶活性、生物學(xué)產(chǎn)量菌絲生長速度等方面均優(yōu)于出發(fā)對照菌株;4個(gè)復(fù)壯菌株在酯酶同工酶和ISSR電泳圖譜中與對照菌株無顯著差異。綜合農(nóng)藝性狀進(jìn)行篩選獲得三個(gè)優(yōu)勢復(fù)壯菌株,分別命名為“PoZ1”、“PoZ2”、“PoZ3”。(2)利用尖端菌絲分離技術(shù)獲得3個(gè)分離菌株,菌絲長速、漆酶活性等性狀測定結(jié)果表明,3個(gè)復(fù)壯菌株在漆酶活性、發(fā)酵液生物產(chǎn)量、生物學(xué)產(chǎn)量等方面均優(yōu)于出發(fā)對照菌株;3個(gè)復(fù)壯菌株母種、栽培種菌絲日平均生長速度均快于出發(fā)對照菌株;有2個(gè)菌株在原種菌絲日平均生長速度快于出發(fā)對照菌株;3個(gè)復(fù)壯菌株在酯酶同工酶和ISSR電泳圖譜中與對照菌株無顯著差異。綜合農(nóng)藝性狀進(jìn)行篩選獲得兩個(gè)優(yōu)勢復(fù)壯菌株分別命名為“PoJ1”和“PoJ2”。(3)運(yùn)用原生質(zhì)體再生技術(shù)分離得到50個(gè)菌株,通過對50個(gè)菌株進(jìn)行菌絲長速、菌絲顏色、菌落形態(tài)等篩選獲得12個(gè)優(yōu)勢復(fù)壯菌株,進(jìn)一步對12個(gè)復(fù)壯菌株的菌絲長速、漆酶活性等性狀研究表明,10個(gè)復(fù)壯菌株母種菌絲和原種菌絲日平均生長速度顯著優(yōu)于對照菌株,6個(gè)菌株在栽培種菌絲日平均生長速度方面優(yōu)于對照菌株,12個(gè)復(fù)壯菌株在漆酶活性、菌絲生物產(chǎn)量、第一潮菇產(chǎn)量等方面均優(yōu)于出發(fā)對照菌株,12個(gè)復(fù)壯菌株在酯酶同工酶和ISSR電泳圖譜中與對照菌株無顯著差異。綜合農(nóng)藝性狀進(jìn)行篩選獲得6個(gè)優(yōu)勢復(fù)壯菌株,分別命名為“Po11”、“Po23”、“Po26”、“Po30”、“Po45”、“Po46”,其中“Po45”菌株在菌絲長速、發(fā)酵液生物產(chǎn)量、第一潮菇產(chǎn)量等方面優(yōu)于其他復(fù)壯菌株。(4)通過對三種復(fù)壯技術(shù)獲得的菌株進(jìn)行篩選比較。結(jié)果表明應(yīng)用原生質(zhì)體再生復(fù)壯技術(shù)提純平菇菌株應(yīng)用效果最佳,利用原生質(zhì)體再生復(fù)壯技術(shù)獲得復(fù)壯菌株在菌絲長速、漆酶活性、第一潮菇產(chǎn)量、農(nóng)藝性狀等方面都要優(yōu)于組織分離與尖端分離復(fù)壯技術(shù)獲得的菌株。
林輝[4](2017)在《蘆竹種質(zhì)資源、繁殖及其栽培食用菌研究》文中研究說明蘆竹是適應(yīng)性強(qiáng)、生物量大的多年生草本植物,可作飼草、生物質(zhì)能源、水保植物等,具有良好的綜合利用價(jià)值。本文對收集的不同地區(qū)和國家的蘆竹進(jìn)行了遺傳特性分析和農(nóng)藝性狀分析;研究了不同溫度對蘆竹腋芽萌發(fā)的影響;不同位置的腋芽對萌發(fā)、幼苗及根系生長影響;不同氮肥使用量對蘆竹幼苗及根系活力影響等。在蘆竹的綜合利用方面,進(jìn)行了利用蘆竹作為主要原料栽培平菇、毛木耳的研究,并對其營養(yǎng)成分進(jìn)行分析和評價(jià),主要結(jié)果如下:1.收集來自非洲和我國不同地區(qū)的8個(gè)蘆竹資源,分別對其rDNA的ITS序列進(jìn)行擴(kuò)增及測定,通過比較序列間遺傳距離及系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建,分析結(jié)果表明Lz2、Lz 3、Lz4、Lz 5的親緣關(guān)系較近,Lz8與花葉蘆竹親緣關(guān)系較近,其余2種均聚類為獨(dú)立分枝,親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。2.選取相同場所同時(shí)種植的不同地區(qū)的蘆竹材料,分別測量其株高、葉長、葉片數(shù)、葉寬、莖粗、莖節(jié)數(shù)、節(jié)間距、叢重、單株重等農(nóng)藝性狀。通過分析比較各個(gè)蘆竹品種的農(nóng)藝性狀,探索不同地區(qū)蘆竹的區(qū)別。結(jié)果表明,不同地區(qū)的蘆竹植株,在莖節(jié)數(shù)、分蘗、單株重、單叢重、光合參數(shù)、碳氮比等方面有顯著差異,變異豐富,變異系數(shù)為14.55%~79.74%,其中單株重的變異系數(shù)最大,葉片數(shù)的變異系數(shù)最小。3.選取腋芽飽滿的蘆竹莖稈作為試驗(yàn)種莖,利用人工氣候箱,設(shè)定不同的溫度,研究分析不同溫度條件下蘆竹種莖的發(fā)芽率和以及Lz1的根系生長情況。結(jié)果表明,溫度對蘆竹腋芽的萌發(fā)及根系生長有顯著影響。不同地區(qū)的蘆竹,其腋芽萌發(fā)率不同。25℃~30℃的條件下,Lz 1的發(fā)芽率為96.67%~98.67%,Lz3的發(fā)芽率為80%~82.67%。30℃時(shí),生長60d的蘆竹Lz1幼苗,根系總長為60.89cm,根表面積為1.86cm2,根尖數(shù)為775個(gè)。4.蘆竹苗期肥力的影響,采用單因素隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì),每試驗(yàn)處理氮肥施用量分別為12g、15g、18g、21g,定期記錄地上部分生長情況,并于2個(gè)月后,測定不同處理蘆竹幼苗的根系活力。結(jié)果:不同的氮肥使用量,對蘆竹幼苗的生物量及根系活力有顯著的影響,隨著氮肥使用量的增加,蘆竹幼苗生物量及根系活力逐漸增加,但增加至一定程度后開始下降。根據(jù)幼苗生物量及根系活力,蘆竹幼苗生長期最佳的氮肥使用量為375 kg/hm2。5.蘆竹栽培平菇的研究表明,不同的培養(yǎng)基配方對平菇菌絲的生長速度有極顯著的影響,其中以Lz2為主要原料的配方菌絲生長最佳。蘆竹栽培平菇的最佳配方為:蘆竹(Lz2)78%,麩皮15%,玉米粉5%,碳酸鈣2%;蘆竹栽培平菇與五節(jié)芒栽培平菇的生物轉(zhuǎn)化率分別為89.72%和88.12%;蘆竹栽培平菇的蛋白質(zhì)為32.6%,氨基酸總量為24.29%,其中必需氨基酸占35.32%;通過CS與AAS分析,蘆竹栽培平菇蛋白質(zhì)的第一限制氨基酸為甲硫氨酸,氨基酸指數(shù)(EAAI)為0.82。通過統(tǒng)計(jì)分析,蘆竹與五節(jié)芒栽培平菇在質(zhì)量和產(chǎn)量方面無明顯差異。6.蘆竹栽培毛木耳的研究表明,不同培養(yǎng)基配方對毛木耳菌絲的生長速度有極顯著的影響。蘆竹栽培毛木耳的最佳配方為:蘆竹(Lz 2)58%,芒萁20%,麩皮15%,玉米粉5%,石膏2%;生物轉(zhuǎn)化率為112.83%;蛋白質(zhì)為15.6%,氨基酸總量為11.77%(必需氨基酸占38.66%);通過CS與AAS分析,第一限制氨基酸為甲硫氨酸,氨基酸指數(shù)(EAAI)為0.87,為良好的蛋白源。通過統(tǒng)計(jì)分析,蘆竹與五節(jié)芒栽培毛木耳在質(zhì)量和產(chǎn)量方面無明顯差異。
鄭偉[5](2017)在《平菇優(yōu)良菌株的選育及評價(jià)》文中提出本試驗(yàn)收集了冀中南地區(qū)33個(gè)平菇栽培菌株,通過酯酶同工酶、ISSR分子標(biāo)記分析、拮抗試驗(yàn)以及出菇試驗(yàn),對33個(gè)平菇栽培菌株進(jìn)行了生理生化和分子標(biāo)記鑒定。在此基礎(chǔ)上,選取了生產(chǎn)性狀優(yōu)劣互補(bǔ)的“99”、“680”和“雙抗”三個(gè)菌株作為親本。通過單孢雜交配對和原生質(zhì)體融合,共獲得176個(gè)雜交子代菌株,并對其進(jìn)行一些列篩選試驗(yàn),旨在獲得平菇優(yōu)良菌株。1.通過拮抗測定、ISSR分子生物標(biāo)記分析和酯酶同工酶酶譜為依據(jù),將供試菌株分為7大類,其中栽培量最大的是以“89”、“99”和“雙抗黑平”為代表的三大類菌株。2.通過單孢分離技術(shù)分離了三個(gè)菌株的擔(dān)孢子,得到“99”單核體2個(gè),“680”單核體5個(gè),“雙抗”單核體3個(gè)。選取菌絲生長較快的親本“99”和“680”單核菌絲分別與“雙抗”單核菌絲進(jìn)行了兩兩雜交配對,得到21個(gè)雜交組合菌株。3.根據(jù)鎖狀聯(lián)合有無進(jìn)一步確定雜交子,篩選出了10個(gè)優(yōu)良雜交子,采用拮抗、酯酶同工酶及出菇等方法對融合子進(jìn)行了進(jìn)一步鑒定和評價(jià)分析。10個(gè)雜交子均與親本有明顯的拮抗線,且具有兩親本菌株的典型酯酶同工酶條帶,確定是雜交菌株,以此為依據(jù)進(jìn)一步篩選出了4個(gè)平菇優(yōu)良雜交子,都具備出菇能力,分別編號為“Pz945”,“Pz935”,“Pz675”,“Pz6115”。4.同時(shí)制備平菇優(yōu)良品種“99”和“雙抗”原生質(zhì)體,并分離了單核體進(jìn)行融合。得到融合子155個(gè),根據(jù)鎖狀聯(lián)合有無進(jìn)一步確定融合子,通過菌絲長勢篩選出14個(gè)長勢較好的融合。
王平[6](2016)在《平菇菌種優(yōu)劣鑒別》文中研究表明平菇菌種的質(zhì)量是影響產(chǎn)量的關(guān)鍵。優(yōu)良的平菇菌種,菌絲粗壯抗病,能廣泛適應(yīng)多種代用栽培料,出菇早,菇形好,產(chǎn)量高。在選購菌種時(shí),不但應(yīng)選擇菌絲生長快、抗逆性強(qiáng)、出菇早、產(chǎn)量高、香味濃的品種,還應(yīng)了解該菌種對溫度、營養(yǎng)、氧氣、濕度、酸堿度等條件的要求,
張亞嬌[7](2015)在《白靈菇原生質(zhì)體育種及遠(yuǎn)緣雜交育種的研究》文中提出為了能選育出產(chǎn)量高、品質(zhì)好、生長周期短、適應(yīng)性較廣的白靈菇新品種,本試驗(yàn)采用原生質(zhì)體再生無性系、原生質(zhì)體紫外誘變育種以及白靈菇與杏鮑菇遠(yuǎn)緣雜交育種的方法對白靈菇菌種進(jìn)行改良,現(xiàn)將結(jié)果報(bào)告如下:1.建立了白靈菇原生質(zhì)體高效制備與再生體系。本試驗(yàn)運(yùn)用單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)從培養(yǎng)基種類、酶濃度、酶解時(shí)間、酶解溫度、菌齡以及穩(wěn)滲劑種類六個(gè)方面確立了白靈菇原生質(zhì)體最佳制備條件為:加富PD液體培養(yǎng)基培養(yǎng)7d的菌絲,在以MgSO4.7H2O為穩(wěn)滲劑配制2%濃度的溶壁酶條件下,30℃酶解2h,原生質(zhì)體得率為37.75×106個(gè)/mL。最佳再生條件:選擇蔗糖為穩(wěn)滲劑的再生培養(yǎng)基,再生率可達(dá)0.89%。2.利用原生質(zhì)體再生無性系及其紫外誘變育種技術(shù),篩選得到一株經(jīng)紫外照射10 s的菌株“10s n29”,該菌株商品性好、生長周期短、產(chǎn)量高且出菇整齊度高,經(jīng)RAPD技術(shù)驗(yàn)證是一株優(yōu)良變異菌株。3.應(yīng)用RAPD、ISSR和SRAP分子標(biāo)記技術(shù)從遺傳差異分析白靈菇和杏鮑菇的親和性,結(jié)果表明白靈菇與杏鮑菇菌株間的遺傳差異和二者的親和性有一定的關(guān)系,白靈菇第一類菌株與杏鮑菇每一類菌株的親和性都高,杏鮑菇第三類菌株與白靈菇每一類菌株的親和性都高。4.白靈菇單孢與杏鮑菇單孢菌株間能發(fā)生單向或雙向核遷移。運(yùn)用ITS-RFLP和EF1a-RFLP技術(shù)從細(xì)胞核以及細(xì)胞質(zhì)水平證明白靈菇與杏鮑菇遠(yuǎn)緣雜交得到的杏白靈雙向核遷移菌株是真正意義上的雜交子,但不能區(qū)別這些異質(zhì)同核的杏白靈菌株間的差異。5.杏白靈雜交子經(jīng)出菇試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)有的性狀偏向白靈菇、有的偏向杏鮑菇、有的介于兩者之間,但它們的生長周期都短于白靈菇,可作為白靈菇的速生優(yōu)質(zhì)菌株。
韓芹芹[8](2012)在《平菇菌種液氮保藏技術(shù)的優(yōu)化及保藏效果鑒定》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理食用菌菌種保藏方法眾多,其中液氮保藏是一種安全有效且能長期保藏菌種的方法。但是液氮保藏過程中的降溫方式、保護(hù)劑及解凍方式等環(huán)節(jié)都影響到菌種保藏效果。為了更好地保存食用菌種質(zhì)資源,需要系統(tǒng)研究菌種液氮保藏過程中的各環(huán)節(jié),并對保藏后的菌種進(jìn)行保藏效果的鑒定,以期為菌種液氮保藏方法提供一定的理論依據(jù)和技術(shù)支持。本實(shí)驗(yàn)選擇皖平菇1號和新平400的原種為實(shí)驗(yàn)材料,設(shè)計(jì)降溫方式、保護(hù)劑及解凍方式三因素三水平的正交試驗(yàn),對高溫型和低溫型的兩個(gè)平菇菌種的液氮保藏技術(shù)進(jìn)行比較系統(tǒng)的研究,并鑒定菌種的液氮保藏效果,主要測定菌絲體生長指標(biāo)、子實(shí)體形態(tài)學(xué)指標(biāo)及產(chǎn)量、子實(shí)體粗蛋白以及可溶性糖含量、子實(shí)體酯酶同工酶譜和SRAP分子標(biāo)記分析,通過以上指標(biāo)鑒定其遺傳穩(wěn)定性,以期找到平菇菌種液氮保藏的適宜條件,也為其它菌種的液氮保藏提供一些有利的借鑒。主要結(jié)論如下:(1)液氮保藏對皖平菇1號和新平400菌絲體生長指標(biāo)影響最小的處理均為不加保護(hù)劑直接將菌種放入液氮,3840℃水浴快速解凍的條件組合。保護(hù)劑和解凍方式是產(chǎn)生影響的兩個(gè)主要因素,降溫方式為次要因素;(2)液氮保藏對皖平菇1號子實(shí)體形態(tài)學(xué)指標(biāo)、子實(shí)體產(chǎn)量產(chǎn)生影響最小的處理組合均為A1B1C3,保護(hù)劑為主要影響因素;對新平400以上各指標(biāo)影響最小的處理均為A3B2C3,解凍方式為主要影響因素。(3)液氮保藏對皖平菇1號和新平400子實(shí)體可溶性蛋白和可溶性糖含量的影響不同。對皖平菇1號可溶性蛋白影響最小的處理為A1B2C1,保護(hù)劑為主要影響因素,對可溶性糖影響最小的處理為A1B1C3,解凍方式為主要影響因素;對新平400子實(shí)體可溶性蛋白影響最小的處理為A3B1C1,降溫方式為主要影響因素,對可溶性糖影響最小的處理為A2B2C1,保護(hù)劑為主要影響因素。(4)液氮保藏對兩個(gè)菌株遺傳穩(wěn)定性沒有明顯影響,子實(shí)體酯酶同工酶譜產(chǎn)生少量差異,試驗(yàn)所選兩個(gè)處理組合(皖平菇1號為A1B1C3和A3B3C2,新平400為A2B3C3和A1B1C2)的子實(shí)體DNASRAP擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)電泳分析,部分引物出現(xiàn)少量特異性條帶,這可能是由于真菌本身變異性較大所致,也有可能是因?yàn)樵谝旱2氐倪^程中,低溫環(huán)境導(dǎo)致了某些抗性基因的變化,這還有待于進(jìn)一步探討。(5)液氮保藏后皖平菇1號酯酶同工酶譜平均每個(gè)處理出現(xiàn)2.9條不同的酶帶,新平400平均每個(gè)處理出現(xiàn)4.8條不同酶帶,SRAP分析皖平菇1號兩個(gè)處理共出現(xiàn)10條差異條帶,新平400共出現(xiàn)23條差異條帶。皖平菇1號兩個(gè)處理出現(xiàn)的特異性條帶數(shù)在總條帶中所占的比例分別為4%和1.8%,新平400兩個(gè)處理分別為11.7%和10.7%。所以,液氮處理后,高溫型菌株皖平菇1號遺傳穩(wěn)定性比低溫型菌株新平400受影響小,而同一菌株的兩個(gè)處理受影響情況相差不大。高溫型平菇菌種對液氮低溫環(huán)境的抵抗力更強(qiáng)。
劉國宇[9](2012)在《耐高溫型平菇菌株篩選與關(guān)鍵栽培技術(shù)研究》文中指出遼寧地區(qū)夏季平菇的栽培面積不斷擴(kuò)大,栽培品種不斷增多。但是由于夏季溫度過高,晝夜溫差小,缺乏優(yōu)良的高溫型平菇品種,以及栽培管理技術(shù)掌握的片面,導(dǎo)致夏季平菇生產(chǎn)頻頻出現(xiàn)失敗,特別是遼寧地區(qū)每年的6月中旬至8月初期,市場上平菇數(shù)量緊缺,且品質(zhì)不好,因此高溫型平菇菌株的篩選與栽培技術(shù)的研究已經(jīng)刻不容緩。本論文針對引進(jìn)的11個(gè)平菇菌株進(jìn)行篩選。通過一級種、二級種菌絲耐高溫試驗(yàn),對菌絲在高溫條件下的長勢、生長速度及污染率做了記錄、測量和分析,同時(shí)結(jié)合高溫出菇試驗(yàn)對菌絲長勢、污染率及現(xiàn)蕾期、轉(zhuǎn)潮期、子實(shí)體產(chǎn)量、品質(zhì)、色澤等進(jìn)行了綜合比較和差異顯著性分析,結(jié)果表明菌株P(guān)9(LN-3)菌絲耐高溫性強(qiáng),在32℃的環(huán)境中,菌絲生長速度快、長勢好、顏色濃白,抗雜菌能力強(qiáng);生物學(xué)性狀表現(xiàn)為子實(shí)體菌蓋平均直徑達(dá)到8.45cm,平均厚度1.52cm,呈灰色,菌褶細(xì)密潔白。以篩選出的產(chǎn)量高、質(zhì)量優(yōu)的耐高溫平菇菌株“LN-3”為試驗(yàn)菌株,研究了高溫條件下關(guān)鍵栽培技術(shù)。確定了最佳培養(yǎng)基配方為玉米芯42%、棉籽殼20%、木屑20%、麥麩10%、稻糠5%、豆餅粉3%,另加適量石灰和石膏,分別占主料總重量的3%和1%;培養(yǎng)基最佳含水量為65-70%;確定了最佳滅菌時(shí)間對菌袋成功率和節(jié)能情況的影響,當(dāng)滅菌時(shí)間達(dá)到12h,菌袋成功率接近100%,用煤量為321kg,而滅菌時(shí)間再延長,菌袋成功率沒有變化,但用煤量增多,浪費(fèi)能源;通過正交試驗(yàn)確定了夏季高溫期菌袋擺放密度,即擺放四層、袋袋間距為1cm、垛垛間距為60cm,同時(shí)結(jié)合適時(shí)的通風(fēng),加大空氣流動,能夠在有效利用空間面積和成功率上找到平衡點(diǎn);結(jié)合大量的栽培試驗(yàn)確定最佳的環(huán)境因子指標(biāo),平菇發(fā)菌期的最適宜溫度為21-25℃、空間相對濕度60-70%,菌絲在長至菌袋1/3后,通過扎眼透氣的方法來增加菌袋內(nèi)的氧氣含量,通過試驗(yàn),菌袋扎眼數(shù)量最適宜的是20個(gè)。子實(shí)體生長期的溫差刺激達(dá)到8-10℃以上,空間相對濕度維持在85-90%。在高溫期平菇生產(chǎn)中病蟲害及雜菌的綜合防治非常重要,它直接影響到平菇的成敗、產(chǎn)量和質(zhì)量。病蟲害及雜菌的防治應(yīng)遵循“預(yù)防為主,綜合防治”的原則,隨時(shí)發(fā)現(xiàn)病蟲害和雜菌隨時(shí)處理,避免傳播擴(kuò)散造成大面積的污染,在管理中注意適時(shí)的通風(fēng),適當(dāng)控溫控濕,保持菇房室內(nèi)外的衛(wèi)生等,盡量采用生物防治、物理防治,必要時(shí)輔以化學(xué)防治,避免產(chǎn)生藥物殘留,保證食品安全。
張麗蓉[10](2011)在《草菇菌種質(zhì)量控制技術(shù)研究》文中提出草菇的生物學(xué)效率約為20%,明顯低于其他食用菌,而菌種是草菇生產(chǎn)中的重要生產(chǎn)資料之一,草菇菌種質(zhì)量的好壞直接關(guān)系到出菇的產(chǎn)量與質(zhì)量。本研究以屏優(yōu)一號、V0023、V尤溪三個(gè)草菇菌株為材料,從菌種制作、菌種純度、菌種活力三個(gè)方面進(jìn)行研究,初步建立了一套草菇菌種質(zhì)量控制技術(shù)。主要研究成果如下:1菌種制作以三個(gè)菌種為材料,研究了不同的草菇栽培種配方、含水量、酸堿度、培養(yǎng)溫度、保藏時(shí)間對出菇產(chǎn)量的影響,結(jié)果表明:棉子殼85%、麩皮10%、過磷酸鈣1%、石灰4%、含水量62%配方產(chǎn)量最高;草菇菌種的最適合含水量為59%-62%;草菇菌種最適合添加4%-6%石灰;培養(yǎng)溫度為21℃-24℃草菇菌種生長速度緩慢,27℃-36℃菌種生長很快,但21℃- 36℃培養(yǎng)的草菇菌種出菇產(chǎn)量無差異;隨著菌種保藏時(shí)間的增大,草菇產(chǎn)量嚴(yán)重下降。2菌種純度以三個(gè)草菇菌株為材料,分別從細(xì)菌、病毒、霉菌三個(gè)方面檢測。細(xì)菌檢測中,向草菇正常菌種瓶中接種不同濃度的細(xì)菌,使之形成隱性污染,再采用平板劃線法、液體培養(yǎng)法和煮沸-PCR法進(jìn)行隱性污染檢測和三種方法靈敏度檢測,結(jié)果表明:三種方法均能用于草菇菌種隱性細(xì)菌污染檢測;平板劃線法和煮沸-PCR法檢測的極限濃度為到104個(gè)/g菌種;液體培養(yǎng)法檢測的極限濃度達(dá)到103個(gè)/g菌種。病毒的檢測采用提取dsRNA技術(shù)并用酶解法驗(yàn)證,結(jié)果表明:陽性對照中能檢測到dsRNA,而三株草菇經(jīng)酶解均無條帶,因此,三株草菇菌株均未感染病毒,dsRNA法能用于檢測草菇菌種是否感染病毒。霉菌檢測可采用平板法,此法的檢測極限濃度為每克菌種中有100個(gè)孢子。3菌種活力通過制備不同保藏時(shí)間的草菇菌種,測定了幾種與菌種老化相關(guān)的指標(biāo),結(jié)果表明:菌種的萌發(fā)速度、纖維素酶活性、多酚氧化酶活性、丙二醛含量、細(xì)胞核數(shù)目、有核細(xì)胞比例以及菌種總RNA提取結(jié)果與保藏時(shí)間及產(chǎn)量呈顯著相關(guān)性,可以作為反映草菇菌種活力的指標(biāo);而淀粉酶活性、蛋白酶活性、木聚糖酶活性、pH值、酸性磷酸酶活性、過氧化物酶活性和超氧化物歧化酶活性與保藏時(shí)間及產(chǎn)量無顯著相關(guān)性,不能作為反映草菇菌種活力的指標(biāo)。
二、怎樣鑒別平菇菌種的優(yōu)劣(論文開題報(bào)告)
(1)論文研究背景及目的
此處內(nèi)容要求:
首先簡單簡介論文所研究問題的基本概念和背景,再而簡單明了地指出論文所要研究解決的具體問題,并提出你的論文準(zhǔn)備的觀點(diǎn)或解決方法。
寫法范例:
本文主要提出一款精簡64位RISC處理器存儲管理單元結(jié)構(gòu)并詳細(xì)分析其設(shè)計(jì)過程。在該MMU結(jié)構(gòu)中,TLB采用叁個(gè)分離的TLB,TLB采用基于內(nèi)容查找的相聯(lián)存儲器并行查找,支持粗粒度為64KB和細(xì)粒度為4KB兩種頁面大小,采用多級分層頁表結(jié)構(gòu)映射地址空間,并詳細(xì)論述了四級頁表轉(zhuǎn)換過程,TLB結(jié)構(gòu)組織等。該MMU結(jié)構(gòu)將作為該處理器存儲系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)的一個(gè)重要組成部分。
(2)本文研究方法
調(diào)查法:該方法是有目的、有系統(tǒng)的搜集有關(guān)研究對象的具體信息。
觀察法:用自己的感官和輔助工具直接觀察研究對象從而得到有關(guān)信息。
實(shí)驗(yàn)法:通過主支變革、控制研究對象來發(fā)現(xiàn)與確認(rèn)事物間的因果關(guān)系。
文獻(xiàn)研究法:通過調(diào)查文獻(xiàn)來獲得資料,從而全面的、正確的了解掌握研究方法。
實(shí)證研究法:依據(jù)現(xiàn)有的科學(xué)理論和實(shí)踐的需要提出設(shè)計(jì)。
定性分析法:對研究對象進(jìn)行“質(zhì)”的方面的研究,這個(gè)方法需要計(jì)算的數(shù)據(jù)較少。
定量分析法:通過具體的數(shù)字,使人們對研究對象的認(rèn)識進(jìn)一步精確化。
跨學(xué)科研究法:運(yùn)用多學(xué)科的理論、方法和成果從整體上對某一課題進(jìn)行研究。
功能分析法:這是社會科學(xué)用來分析社會現(xiàn)象的一種方法,從某一功能出發(fā)研究多個(gè)方面的影響。
模擬法:通過創(chuàng)設(shè)一個(gè)與原型相似的模型來間接研究原型某種特性的一種形容方法。
三、怎樣鑒別平菇菌種的優(yōu)劣(論文提綱范文)
(1)滑菇次級代謝產(chǎn)物的挖掘(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
第一章 緒論 |
1.1 食藥用真菌的研究現(xiàn)狀 |
1.1.1 食藥用真菌有效成分及其藥理作用 |
1.1.2 食藥用菌的發(fā)展現(xiàn)狀 |
1.2 食藥用真菌的發(fā)酵歷史及應(yīng)用 |
1.2.1 食藥用真菌的發(fā)酵歷史 |
1.2.2 食藥用真菌深層發(fā)酵的應(yīng)用 |
1.3 LC-MS/MS聯(lián)用技術(shù)的發(fā)展及應(yīng)用 |
1.3.1 LC-MS/MS的發(fā)展 |
1.3.2 LC-MS/MS的應(yīng)用 |
1.4 研究目的及意義 |
1.5 研究內(nèi)容 |
1.6 技術(shù)路線 |
第二章 滑菇發(fā)酵液化學(xué)成分研究 |
2.1 引言 |
2.2 實(shí)驗(yàn)材料、儀器及試劑 |
2.2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
2.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器 |
2.2.3 實(shí)驗(yàn)試劑 |
2.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
2.3.1 種子液的制備 |
2.3.2 培養(yǎng)基的配制 |
2.3.3 接種與培養(yǎng) |
2.3.4 萃取 |
2.4 滑菇乙酸乙酯層的分離與純化 |
2.4.1 滑菇浸膏的分離與純化 |
2.4.2 部分化合物分離純化示意圖 |
2.5 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與結(jié)構(gòu)鑒定 |
2.5.1 實(shí)驗(yàn)結(jié)果 |
2.5.2 化合物的結(jié)構(gòu)鑒定及波普數(shù)據(jù) |
2.6 滑菇中部分單體化合的降血糖活性研究 |
2.6.1 前言 |
2.6.2 實(shí)驗(yàn)方法 |
2.6.3 .判斷依據(jù) |
2.6.4 .初篩結(jié)果 |
2.6.5 結(jié)論 |
2.7 小結(jié) |
第三章 不同發(fā)酵條件滑菇發(fā)酵液LC-MS分析 |
3.1 前言 |
3.2 實(shí)驗(yàn)材料、儀器及試劑 |
3.2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
3.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器 |
3.2.3 實(shí)驗(yàn)試劑 |
3.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
3.3.1 不同培養(yǎng)基的制備 |
3.3.2 接種與培養(yǎng) |
3.3.3 發(fā)酵液的處理 |
3.4 LC-MS法分析不同條件下的發(fā)酵代謝產(chǎn)物 |
3.4.1 樣品前處理 |
3.4.2 色譜質(zhì)譜采集條件 |
3.4.3 代謝物定性定量分析 |
3.4.4 差異代謝物分析 |
3.5 小結(jié) |
第四章 不同培養(yǎng)條件滑菇發(fā)酵液菌絲體轉(zhuǎn)錄組分析 |
4.1 前言 |
4.2 實(shí)驗(yàn)材料、儀器及試劑 |
4.2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
4.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器 |
4.2.3 實(shí)驗(yàn)試劑 |
4.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
4.3.1 種子液的制備 |
4.3.2 四種發(fā)酵條件 |
4.3.3 接種與培養(yǎng) |
4.3.4 發(fā)酵液的處理 |
4.4 四種滑菇發(fā)酵液轉(zhuǎn)錄組測序分析 |
4.4.1 樣品采集和制備 |
4.4.2 序列組裝 |
4.4.3 Unigene的獲得及其分析 |
4.5 結(jié)果與分析 |
4.5.1 測序信息統(tǒng)計(jì) |
4.5.2 轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)組裝 |
4.5.3 Unigene功能注釋 |
4.5.4 Unigene的NR注釋 |
4.5.5 差異表達(dá)分析 |
4.5.6 差異表達(dá)基因GO功能富集 |
4.5.7 差異基因KEGG富集分析 |
4.6 小結(jié) |
第五章 結(jié)論與展望 |
5.1 結(jié)論 |
5.2 展望 |
致謝 |
參考文獻(xiàn) |
附錄Ⅰ 化合物10的譜圖 |
附錄Ⅱ 攻讀碩士期間發(fā)表的論文 |
(2)不同黑木耳品種種質(zhì)鑒定及優(yōu)良菌株篩選研究(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
第1章 緒論 |
1.1 黑木耳概述 |
1.1.1 黑木耳生物學(xué)特征 |
1.1.2 黑木耳的分布及生態(tài)習(xí)性 |
1.1.3 食用菌及黑木耳的營養(yǎng)價(jià)值 |
1.1.4 黑木耳的栽培歷史 |
1.1.5 黑木耳的國內(nèi)外研究進(jìn)展 |
1.2 食用菌市場菌種質(zhì)量的發(fā)展現(xiàn)狀及對策 |
1.2.1 食用菌菌種質(zhì)量存在的問題 |
1.2.2 食用菌菌種質(zhì)量與菌種管理的對策 |
1.3 黑木耳種質(zhì)資源遺傳分析方法及研究進(jìn)展 |
1.3.1 傳統(tǒng)的生物學(xué)方法 |
1.3.2 .生化標(biāo)記:酯酶同工酶 |
1.3.3 DNA分子標(biāo)記 |
1.4 液體發(fā)酵菌種技術(shù)在食用菌上的應(yīng)用 |
1.5 吊袋栽培技術(shù)在木耳屬的應(yīng)用 |
1.6 研究背景、目的和意義 |
1.7 技術(shù)路線及主要研究內(nèi)容 |
第2章 黑木耳菌株生理特性、多樣性研究 |
2.1 試驗(yàn)材料 |
2.1.1 供試菌株 |
2.1.2 試驗(yàn)試劑和儀器 |
2.2 試驗(yàn)方法 |
2.2.1 供試培養(yǎng)基制備 |
2.2.2 菌絲活化 |
2.2.3 對峙培養(yǎng)法 |
2.3 試驗(yàn)結(jié)果與分析 |
2.3.1 拮抗測定結(jié)果 |
2.3.2 小結(jié) |
第3章 酯酶同工酶多樣性分析 |
3.1 試驗(yàn)材料 |
3.1.1 供試菌株 |
3.1.2 試劑、儀器與設(shè)備 |
3.1.3 試劑的配制 |
3.2 酯酶同工酶方法 |
3.2.1 菌絲體培養(yǎng) |
3.2.2 凝膠制備 |
3.2.3 點(diǎn)樣 |
3.2.4 電泳 |
3.2.5 染色 |
3.2.6 拍照統(tǒng)計(jì) |
3.3 試驗(yàn)結(jié)果分析 |
3.3.1 酶譜多樣性 |
3.3.2 聚類分析 |
3.3.3 小結(jié) |
第4章 黑木耳菌株SRAP標(biāo)記分析 |
4.1 供試菌株 |
4.2 試劑、設(shè)備及儀器 |
4.3 黑木耳菌株DNA的提取 |
4.3.1 DNA提取方法 |
4.3.2 DNA質(zhì)量檢測 |
4.4 黑木耳引物設(shè)計(jì) |
4.5 黑木耳SRAP-PCR擴(kuò)增條件 |
4.6 引物篩選 |
4.7 水平瓊脂糖凝膠電泳 |
4.8 數(shù)據(jù)分析 |
4.9 試驗(yàn)結(jié)果與分析 |
4.9.1 DNA提取結(jié)果 |
4.9.2 引物篩選結(jié)果 |
4.9.3 引物擴(kuò)增結(jié)果 |
4.9.4 基于SRAP分子標(biāo)記的遺傳距離、聚類分析 |
4.9.5 小結(jié) |
第5章 黑木耳菌株ISSR標(biāo)記分析 |
5.1 供試菌株 |
5.2 試劑、設(shè)備及儀器 |
5.3 黑木耳菌株DNA的提取 |
5.4 黑木耳引物設(shè)計(jì) |
5.5 黑木耳ISSR-PCR擴(kuò)增條件 |
5.5.1 PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系 |
5.5.2 擴(kuò)增程序 |
5.6 引物篩選 |
5.7 水平瓊脂糖凝膠電泳 |
5.8 數(shù)據(jù)分析 |
5.9 試驗(yàn)結(jié)果與分析 |
5.9.1 引物篩選結(jié)果 |
5.9.2 引物擴(kuò)增結(jié)果 |
5.9.3 基于ISSR分子標(biāo)記的遺傳距離、聚類分析 |
5.9.4 小結(jié) |
第6章 優(yōu)良菌株篩選研究 |
6.1 試驗(yàn)菌株 |
6.2 培養(yǎng)基配方 |
6.3 菌絲生長速度和生長勢的測定 |
6.4 出菇管理 |
6.4.1 菌種制作 |
6.4.2 打孔催芽,吊袋入棚 |
6.4.3 吊袋式栽培 |
6.4.4 栽培管理 |
6.4.5 試驗(yàn)地點(diǎn)及記錄內(nèi)容 |
6.5 試驗(yàn)結(jié)果與分析 |
6.5.1 母種生理特性 |
6.5.2 不同黑木耳菌株出耳性狀比較 |
6.5.3 木耳菌株抗雜情況 |
6.5.4 不同黑木耳菌株產(chǎn)量情況分析 |
6.6 小結(jié) |
結(jié)論與討論 |
致謝 |
參考文獻(xiàn) |
個(gè)人簡歷 |
附錄 |
(3)平菇菌株提純復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用效果研究(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
縮略詞表 |
第一章 緒論 |
1.1 平菇概述 |
1.1.1 平菇的地位及特性 |
1.1.2 平菇的食藥用價(jià)值 |
1.1.3 平菇的栽培現(xiàn)狀 |
1.2 菌種退化 |
1.2.1 菌種退化概念及表現(xiàn) |
1.2.2 引起菌種退化的原因 |
1.3 菌種老化 |
1.3.1 菌種老化概念及表現(xiàn) |
1.3.2 菌種老化的原因 |
1.4 菌種提純復(fù)壯 |
1.4.1 菌種提純復(fù)壯的措施 |
1.4.2 菌種提純復(fù)壯技術(shù) |
1.5 菌種質(zhì)量檢測 |
1.5.1 菌種質(zhì)量概括 |
1.5.2 菌種質(zhì)量檢測的方法 |
1.6 研究的技術(shù)路線、目的和意義 |
1.6.1 研究目的意義 |
1.6.2 技術(shù)路線 |
第二章 組織分離復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用研究 |
2.1 試驗(yàn)材料 |
2.1.1 供試菌株 |
2.1.2 供試培養(yǎng)基 |
2.1.3 供試試劑及配制 |
2.1.4 主要儀器及設(shè)備 |
2.2 試驗(yàn)方法 |
2.2.1 組織分離法 |
2.2.2 平板菌絲長速測定 |
2.2.3 原種菌絲長速測定 |
2.2.4 栽培種菌絲長速測定 |
2.2.5 液體發(fā)酵液生物產(chǎn)量測定 |
2.2.6 漆酶活性測定 |
2.2.7 出菇試驗(yàn) |
2.2.8 遺傳差異檢測 |
2.3 結(jié)果與分析 |
2.3.1 組織分離 |
2.3.2 組織分離復(fù)壯菌株母種長速與漆酶活性測定 |
2.3.3 組織分離復(fù)壯菌株原種長速測定 |
2.3.4 組織分離復(fù)壯菌株栽培種長速與漆酶測定 |
2.3.5 組織分離復(fù)壯菌株發(fā)酵液生物產(chǎn)量與漆酶測定 |
2.3.6 組織分離復(fù)壯菌株農(nóng)藝性狀 |
2.3.7 組織分離復(fù)壯菌第一潮菇產(chǎn)量測定 |
2.3.8 組織分離復(fù)壯菌株真實(shí)性檢測 |
2.4 小結(jié) |
第三章 尖端分離復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用研究 |
3.1 試驗(yàn)材料 |
3.1.1 供試菌株 |
3.1.2 供試培養(yǎng)基及制備 |
3.1.3 供試試劑及配制 |
3.1.4 主要儀器設(shè)備 |
3.2 試驗(yàn)方法 |
3.2.1 尖端菌絲分離法 |
3.2.2 母種菌絲長速測定 |
3.2.3 原種菌絲長速測定 |
3.2.4 栽培種菌絲長速測定 |
3.2.5 復(fù)壯菌株發(fā)酵液生物產(chǎn)量測定 |
3.2.6 復(fù)壯菌株漆酶活性測定 |
3.2.7 復(fù)壯菌株出菇驗(yàn)證 |
3.2.8 復(fù)壯菌株真實(shí)性檢測 |
3.3 結(jié)果與分析 |
3.3.1 尖端分離 |
3.3.2 尖端分離復(fù)壯菌株母種長速與漆酶活性測定 |
3.3.3 尖端分離復(fù)壯菌株原種菌絲生長速度測定結(jié)果 |
3.3.4 尖端分離復(fù)壯菌株栽培種長速與漆酶活性測定 |
3.3.5 尖端分離復(fù)壯菌株發(fā)酵液生物產(chǎn)量與漆酶測定 |
3.3.6 尖端分離復(fù)壯菌株農(nóng)藝性狀 |
3.3.7 尖端分離復(fù)壯菌株第一潮菇產(chǎn)量測定 |
3.3.8 尖端分離菌株真實(shí)性檢測 |
3.4 小結(jié) |
第四章 原生質(zhì)體再生復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用研究 |
4.1 試驗(yàn)材料 |
4.1.1 供試菌株 |
4.1.2 供試培養(yǎng)基及制備 |
4.1.3 供試試劑及配制 |
4.1.4 主要儀器設(shè)備 |
4.2 試驗(yàn)方法 |
4.2.1 出發(fā)菌株的原生質(zhì)體的制備再生與再生菌絲初步篩選 |
4.2.2 母種菌絲長速測定 |
4.2.3 原種菌絲長速測定 |
4.2.4 栽培種菌絲長速測定 |
4.2.5 復(fù)壯菌株發(fā)酵液生物產(chǎn)量測定 |
4.2.6 復(fù)壯菌株漆酶活性測定 |
4.2.7 復(fù)壯菌株出菇驗(yàn)證 |
4.2.8 復(fù)壯菌株真實(shí)性檢測 |
4.3 結(jié)果與分析 |
4.3.1 原生質(zhì)體的制備 |
4.3.2 原生質(zhì)體再生菌株篩選 |
4.3.3 原生質(zhì)體再生復(fù)壯菌株母種長速度與漆酶活性測定 |
4.3.4 原種長速測定 |
4.3.5 原生質(zhì)體再生復(fù)壯菌株栽培種長速與漆酶活性測定 |
4.3.6 原生質(zhì)體再生復(fù)壯菌株發(fā)酵液生物產(chǎn)量與漆酶活性測定 |
4.3.7 原生質(zhì)體再生復(fù)壯菌株農(nóng)藝性狀比較結(jié)果 |
4.3.8 原生質(zhì)體復(fù)壯菌株第一潮菇產(chǎn)量測定 |
4.3.9 原生質(zhì)體再生復(fù)壯菌株真實(shí)性檢測 |
4.4 小結(jié) |
第五章 討論與結(jié)論 |
參考文獻(xiàn) |
作者簡歷 |
致謝 |
(4)蘆竹種質(zhì)資源、繁殖及其栽培食用菌研究(論文提綱范文)
摘要 |
ABSTRACT |
第一章 綜述 |
1 蘆竹種質(zhì)資源研究與進(jìn)展 |
1.1 蘆竹的種屬及其分布 |
1.2 蘆竹的農(nóng)藝性狀 |
2 蘆竹繁殖的研究與進(jìn)展 |
2.1 蘆竹的傳統(tǒng)繁殖方式 |
2.2 蘆竹的組培快繁 |
2.3 氮肥對蘆竹苗期生長的影響 |
2.4 溫度對蘆竹腋芽萌發(fā)的影響 |
3 蘆竹的利用與研究 |
3.1 蘆竹綜合利用價(jià)值 |
3.2 平菇的研究進(jìn)展及利用價(jià)值 |
3.3 毛木耳栽培及應(yīng)用前景 |
4 本課題的研究意義 |
第二章 蘆竹種質(zhì)資源分析 |
1 材料與方法 |
1.1 材料 |
1.2 基因組DNA的提取 |
1.3 序列擴(kuò)增及測定 |
1.4 蘆竹品種序列比對及遺傳距離分析 |
1.5 蘆竹品種系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物檢測 |
2.2 序列分析 |
2.3 遺傳距離分析 |
2.4 系統(tǒng)發(fā)育分析 |
3 討論 |
第三章 蘆竹不同品種農(nóng)藝性狀的研究 |
1 材料與方法 |
1.1 試驗(yàn)材料 |
1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì) |
1.3 蘆竹農(nóng)藝性狀的測定 |
1.4 蘆竹碳氮比的測定 |
1.5 蘆竹主要營養(yǎng)成分測定 |
1.6 數(shù)據(jù)處理 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 不同地區(qū)的蘆竹主要農(nóng)藝性狀 |
2.2 不同地區(qū)的蘆竹光合參數(shù)比較 |
2.3 蘆竹主要營養(yǎng)成分分析研究 |
2.4 不同地區(qū)蘆竹碳氮比分析研究 |
3 討論 |
第四章 蘆竹扦插繁殖的研究 |
1 材料與方法 |
1.1 試驗(yàn)材料 |
1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì) |
2 研究方法 |
2.1 溫度對蘆竹發(fā)芽率的影響 |
2.2 溫度對蘆竹根系生長的影響 |
2.3 同一種莖不同位置腋芽對發(fā)芽的影響 |
2.4 不同地區(qū)對蘆竹腋芽生長的影響 |
2.5 不同氮肥對蘆竹苗期地上部分生長的影響 |
2.6 不同氮肥對蘆竹苗期地下部分生長的影響 |
2.7 不同氮肥對蘆竹主要營養(yǎng)成分的影響 |
2.8 數(shù)據(jù)處理 |
3 結(jié)果與分析 |
3.1 溫度對蘆竹發(fā)芽率的影響 |
3.2 同一種莖不同腋芽對發(fā)芽率的影響 |
3.3 不同地區(qū)的蘆竹對發(fā)芽率的影響 |
3.4 溫度對蘆竹根系生長的影響 |
3.5 不同氮肥對蘆竹苗期地上部分生長情況的影響 |
3.6 不同氮肥對蘆竹苗期地下部分生長情況的影響 |
3.7 不同氮肥對蘆竹主要營養(yǎng)成分的影響 |
4 討論 |
第五章 蘆竹栽培平菇及其主要營養(yǎng)成分的研究 |
1 試驗(yàn)材料 |
1.1 供試菌株 |
1.2 試驗(yàn)所用主要儀器設(shè)備 |
2 試驗(yàn)方法 |
2.1 不同地區(qū)蘆竹栽培平菇菌絲生長試驗(yàn) |
2.2 蘆竹栽培平菇試驗(yàn) |
2.3 蘆竹栽培平菇主要營養(yǎng)成分分析 |
2.4 蘆竹栽培平菇子實(shí)體蛋白質(zhì)營養(yǎng)評價(jià) |
3 結(jié)果與分析 |
3.1 不同配方菌絲生長結(jié)果 |
3.2 蘆竹栽培平菇栽培試驗(yàn)結(jié)果 |
3.3 蘆竹栽培鮮平菇主要營養(yǎng)成分結(jié)果 |
3.4 不同培養(yǎng)料的平菇子實(shí)體氨基酸含量的測定 |
3.5 蘆竹栽培平菇子實(shí)體蛋白質(zhì)營養(yǎng)評價(jià) |
3.6 蘆竹栽培平菇子實(shí)體必需氨基酸指數(shù) |
4 討論 |
4.1 蘆竹栽培平菇培養(yǎng)基配方篩選 |
4.2 蘆竹栽培平菇試驗(yàn) |
4.3 蘆竹栽培平菇主要營養(yǎng)成分 |
第六章 蘆竹栽培毛木耳及其主要營養(yǎng)成分的研究 |
1 試驗(yàn)材料 |
1.1 供試菌株 |
1.2 試驗(yàn)所用主要儀器設(shè)備 |
2 試驗(yàn)方法 |
2.1 蘆竹栽培毛木耳菌絲生長試驗(yàn) |
2.2 蘆竹栽培毛木耳試驗(yàn) |
2.3 蘆竹栽培毛木耳主要成分分析 |
2.4 毛木耳子實(shí)體蛋白質(zhì)營養(yǎng)評價(jià) |
3 結(jié)果與分析 |
3.1 不同配方菌絲生長結(jié)果 |
3.2 蘆竹栽培毛木耳栽培試驗(yàn)結(jié)果 |
3.3 蘆竹栽培鮮毛木耳主要成分分析結(jié)果 |
3.4 不同培養(yǎng)料的毛木耳子實(shí)體氨基酸含量的測定 |
3.5 蘆竹栽培毛木耳子實(shí)體蛋白質(zhì)營養(yǎng)評價(jià) |
3.6 蘆竹栽培毛木耳必需氨基酸指數(shù) |
4 討論 |
4.1 蘆竹栽培毛木耳培養(yǎng)基配方篩選試驗(yàn) |
4.2 蘆竹栽培毛木耳試驗(yàn) |
4.3 蘆竹栽培毛木耳主要營養(yǎng)成分 |
結(jié)論 |
參考文獻(xiàn) |
附錄 |
致謝 |
(5)平菇優(yōu)良菌株的選育及評價(jià)(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
第一章 緒論 |
1.1 平菇的概述 |
1.1.1 平菇的分類及特性 |
1.1.2 平菇的營養(yǎng)價(jià)值 |
1.1.3 平菇的栽培現(xiàn)狀 |
1.2 食用菌的概述 |
1.2.1 食用菌的育種方法 |
1.2.2 選擇育種 |
1.2.3 誘變育種 |
1.2.4 雜交育種 |
1.2.5 原生質(zhì)體融合育種 |
1.3 食用菌研究中雜交育種應(yīng)用 |
1.3.1 雜交育種的特點(diǎn) |
1.3.2 雜種優(yōu)勢 |
1.3.3 雜交育種的一般程序 |
1.3.3.2 單孢分離 |
1.3.3.3 配對雜交 |
1.3.3.2 優(yōu)良菌株篩選與鑒定 |
1.4 同工酶技術(shù)的概述 |
1.5 研究的目的和意義 |
技術(shù)路線 |
第二章 材料和方法 |
2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
2.1.1 供試菌株及來源 |
2.1.2 供試培養(yǎng)基 |
2.1.2.1 拮抗試驗(yàn)、同工酶電泳和RAPD分析培養(yǎng)基: |
2.1.2.2 麥粒種原種培養(yǎng)基 |
2.1.2.3 出菇試驗(yàn)培養(yǎng)基 |
2.2 出菇試驗(yàn) |
2.3 拮抗試驗(yàn) |
2.4 酯酶同工酶電泳 |
2.4.1 供試菌株及其來源 |
2.4.2 菌絲體培養(yǎng)及樣品處理 |
2.4.3 試劑配制 |
2.4.4 凝膠制備 |
2.4.5 電泳 |
2.4.6 酯酶(EST)染液配制及染色 |
2.4.7 分析 |
2.5 ISSR分析 |
2.5.1 供試菌株 |
2.5.2 菌絲體培養(yǎng)及收集 |
2.5.3 供試試劑 |
2.5.4 DNA提取 |
2.5.4.1 DNA提取方法 |
2.5.5 DNA質(zhì)量的檢測 |
2.5.6 反應(yīng)體系 |
2.5.7 反應(yīng)條件 |
2.5.8 電泳 |
2.5.9 數(shù)據(jù)處理 |
2.6 平菇夏季菌株品比篩選出菇試驗(yàn) |
2.6.1 供試菌株 |
2.7 平菇早秋菌株品比篩選出菇試驗(yàn) |
2.8 平菇優(yōu)良品種雜交選育 |
2.8.1 孢子單核菌絲分離 |
2.8.1.1 多孢分離 |
2.8.1.2 單孢分離 |
2.8.1.3 單核菌絲鑒定 |
2.8.2 單孢雜交的方法 |
2.8.3 雜交菌株的鑒定與評價(jià) |
2.8.3.1 拮抗測定 |
2.8.3.2 酯酶同工酶分析 |
2.8.3.3 雜交菌株出菇試驗(yàn) |
2.9 平菇優(yōu)良品種原生質(zhì)體融合 |
2.9.1 試驗(yàn)材料及培養(yǎng)基 |
2.9.2 原生質(zhì)體制備 |
2.9.3 原生質(zhì)體再生融合 |
2.9.3.1 原生質(zhì)體再生培養(yǎng) |
2.9.3.2 原生質(zhì)體融合 |
2.9.3.3 原生質(zhì)體融合子出菇試驗(yàn) |
第三章 結(jié)果與分析 |
3.1 菌株的鑒定及出發(fā)菌株選擇 |
3.1.1 拮抗試驗(yàn)結(jié)果分析 |
3.1.2 酯酶同工酶結(jié)果分析 |
3.2 ISSR分析 |
3.2.1 DNA提取結(jié)果 |
3.2.2 引物篩選 |
3.2.3 ISSR擴(kuò)增圖譜分析 |
3.3 平菇夏季菌株品比篩選出菇試驗(yàn) |
3.4 平菇早秋菌株品比篩選出菇試驗(yàn) |
3.5 平菇優(yōu)良品種雜交選育 |
3.5.1 單孢子鑒定結(jié)果 |
3.5.2 單孢雜交結(jié)果 |
3.5.3 單孢雜交子的拮抗測定 |
3.6 酯酶同工酶分析 |
3.6.1 酯酶同工酶電泳結(jié)果 |
3.7 雜交菌株出菇試驗(yàn)結(jié)果 |
3.8 平菇優(yōu)良品種原生質(zhì)體融合結(jié)果 |
3.8.1 原生質(zhì)體單核菌絲鑒定篩選結(jié)果 |
3.8.2 原生質(zhì)體單核菌絲融合結(jié)果 |
3.8.3 原生質(zhì)體融合子篩選結(jié)果 |
第四章 討論與結(jié)論 |
參考文獻(xiàn) |
致謝 |
個(gè)人簡歷 |
攻讀碩士學(xué)位期間發(fā)表的論文和科研成果 |
(6)平菇菌種優(yōu)劣鑒別(論文提綱范文)
一、優(yōu)質(zhì)菌種的特征 |
二、劣質(zhì)菌種的特征 |
(7)白靈菇原生質(zhì)體育種及遠(yuǎn)緣雜交育種的研究(論文提綱范文)
摘要 |
ABSTRACT |
縮略詞 |
第一章 引言 |
第一節(jié) 白靈菇概述 |
1.1 白靈菇簡介 |
1.2 白靈菇的食藥用價(jià)值 |
1.3 白靈菇的形態(tài)特征及其栽培要點(diǎn) |
1.4 白靈菇的相關(guān)研究 |
第二節(jié) 食用菌育種方法概述 |
2.1 食用菌傳統(tǒng)育種方法及研究 |
2.2 原生質(zhì)體技術(shù)育種 |
2.3 基因工程育種 |
第三節(jié) 食用菌菌種鑒定方法的研究 |
第四節(jié) 本研究的目的和意義 |
第五節(jié) 本試驗(yàn)技術(shù)路線 |
第二章 原生質(zhì)體技術(shù)選育白靈菇優(yōu)良變異菌株 |
第一節(jié) 原生質(zhì)體制備及再生條件的優(yōu)化 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 試劑 |
1.4 儀器與設(shè)備 |
1.5 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 不同單因素對原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響 |
2.2 復(fù)合因素對原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響 |
2.3 再生培養(yǎng)基種類對原生質(zhì)體再生率的影響 |
3 結(jié)論與討論 |
第二節(jié) 白靈菇原生質(zhì)體再生無性系及紫外誘變菌株的篩選 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 儀器與設(shè)備 |
1.4 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 不同紫外誘變劑量對白靈菇原生質(zhì)體致死率的影響 |
2.2 白靈菇再生無性系及紫外誘變菌株的初篩結(jié)果 |
2.3 白靈菇再生無性系及紫外誘變菌株的復(fù)篩結(jié)果 |
3 結(jié)論與討論 |
第三節(jié) 白靈菇復(fù)篩菌株出菇試驗(yàn)及優(yōu)良變異菌株的分子驗(yàn)證 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基配方 |
1.3 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 供試白靈菇菌株出菇結(jié)果 |
2.2 白靈菇優(yōu)良菌株分子驗(yàn)證結(jié)果 |
3 結(jié)論與討論 |
第三章 白靈菇與杏鮑菇遠(yuǎn)緣雜交育種 |
第一節(jié) 從遺傳差異分析白靈菇與杏鮑菇的親和性 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 主要儀器 |
1.4 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 白靈菇與杏鮑菇親和性分析 |
2.2 白靈菇與杏鮑菇遺傳差異分析 |
2.3 白靈菇和杏鮑菇遺傳差異與親和性關(guān)系分析 |
3 結(jié)論與討論 |
第二節(jié) 白靈菇與杏鮑菇之間核遷移鑒定的研究 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基配方 |
1.3 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 白靈菇與杏鮑菇雜交核遷移菌株獲得 |
2.2 核遷移菌株ITS鑒定 |
2.3 克隆分析 |
2.4 核遷移菌株EF1a鑒定 |
3 結(jié)論與討論 |
第三章 杏白靈雙向核遷移菌株出菇試驗(yàn) |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基配方 |
1.3 試驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 供試菌株生長周期比較分析 |
2.2 供試菌株表觀性狀分析 |
2.3 供試菌株農(nóng)藝性狀比較分析 |
3 結(jié)論與討論 |
總結(jié)與展望 |
參考文獻(xiàn) |
碩士期間發(fā)表論文情況 |
致謝 |
附錄一 |
附錄二 |
(8)平菇菌種液氮保藏技術(shù)的優(yōu)化及保藏效果鑒定(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
1 文獻(xiàn)綜述 |
1.1 國內(nèi)外研究動態(tài) |
1.1.1 食用菌菌種的常用保藏方法 |
1.1.2 食用菌菌種的液氮保藏技術(shù) |
1.1.3 菌種保藏效果的鑒定 |
1.1.4 同工酶技術(shù) |
1.1.5 分子標(biāo)記技術(shù) |
1.1.6 分子標(biāo)記技術(shù)在遺傳穩(wěn)定性研究中的應(yīng)用 |
2 引言 |
3 材料和方法 |
3.1 試驗(yàn)材料 |
3.2 主要試劑和儀器 |
3.2.1 主要試劑 |
3.2.2 主要儀器 |
3.3 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和技術(shù)路線 |
3.3.1 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) |
3.3.2 技術(shù)路線 |
3.4 測定項(xiàng)目和方法 |
3.4.1 培養(yǎng)基配方 |
3.4.2 菌絲體生長指標(biāo)的測定 |
3.4.3 子實(shí)體生長指標(biāo)的測定 |
3.4.4 子實(shí)體可溶性蛋白含量的測定 |
3.4.5 子實(shí)體可溶性糖含量的測定 |
3.4.6 子實(shí)體酯酶同工酶譜的測定 |
3.4.7 子實(shí)體DNA的提取 |
3.4.8 子實(shí)體DNA的SRAP擴(kuò)增及電泳分析 |
4 結(jié)果與分析 |
4.1 液氮保藏對菌絲體和子實(shí)體生長指標(biāo)的影響 |
4.1.1 菌種萌發(fā)時(shí)間和萌發(fā)率 |
4.1.2 菌絲體生長速度和長勢 |
4.1.3 子實(shí)體形態(tài)學(xué)指標(biāo) |
4.1.4 子實(shí)體平均產(chǎn)量 |
4.2 液氮保藏對平菇子實(shí)體可溶性蛋白和可溶性糖含量的影響 |
4.2.1 子實(shí)體可溶性蛋白含量 |
4.2.2 子實(shí)體可溶性糖含量 |
4.3 液氮保藏對平菇菌株遺傳穩(wěn)定性的影響 |
4.3.1 液氮保藏對平菇子實(shí)體同工酶譜的影響 |
4.3.2 平菇子實(shí)體總DNA的提取 |
4.3.3 子實(shí)體DNA的SRAP擴(kuò)增產(chǎn)物電泳分析 |
5 討論 |
5.1 液氮保存對平菇菌絲體生長指標(biāo)的影響 |
5.2 液氮保藏對平菇子實(shí)體生長指標(biāo)的影響 |
5.3 液氮保藏對平菇子實(shí)體可溶性蛋白和可溶性糖含量的影響 |
5.4 液氮保藏對平菇遺傳穩(wěn)定性的影響 |
5.4.1 液氮保藏對平菇子實(shí)體酯酶同工酶譜的影響 |
5.4.2 液氮保藏對平菇子實(shí)體DNASRAP擴(kuò)增產(chǎn)物的影響 |
6 結(jié)論 |
參考文獻(xiàn) |
致謝 |
作者簡介 |
在讀期間發(fā)表的論文 |
(9)耐高溫型平菇菌株篩選與關(guān)鍵栽培技術(shù)研究(論文提綱范文)
摘要 |
Abstract |
第一章 緒論 |
1.1 引言 |
1.2 研究意義 |
1.3 國內(nèi)外平菇研究現(xiàn)狀 |
1.3.1 平菇發(fā)展?fàn)顩r |
1.3.2 平菇發(fā)展目前存在問題 |
1.4 研究內(nèi)容與技術(shù)路線 |
1.4.1 研究內(nèi)容 |
1.4.2 技術(shù)路線 |
第二章 耐高溫型平菇菌株的篩選 |
2.1 試驗(yàn)材料 |
2.1.1 儀器與設(shè)備 |
2.1.2 供試菌株 |
2.1.3 供試培養(yǎng)基 |
2.2 試驗(yàn)方法 |
2.2.1 菌絲復(fù)壯、活化菌種 |
2.2.2 一級種(母種)菌絲耐高溫試驗(yàn) |
2.2.3 二級種(原種)菌絲耐高溫試驗(yàn) |
2.2.4 出菇試驗(yàn) |
2.3 結(jié)果與分析 |
2.3.1 一級種菌絲耐高溫試驗(yàn) |
2.3.2 二級種菌絲耐高溫試驗(yàn) |
2.3.3 各菌株高溫條件下栽培試驗(yàn)比較分析 |
2.4 小結(jié)與討論 |
2.4.1 一級種菌絲耐高溫情況 |
2.4.2 二級種菌絲耐高溫情況 |
2.4.3 各菌株高溫條件下栽培試驗(yàn) |
2.4.4 各菌株高溫性的綜合評定 |
第三章 平菇高溫期關(guān)鍵栽培技術(shù)研究 |
3.1 試驗(yàn)材料 |
3.1.1 培養(yǎng)料 |
3.1.2 場地 |
3.1.3 供試菌株 |
3.1.4 二級種生產(chǎn) |
3.1.5 栽培方式 |
3.2 試驗(yàn)方法 |
3.2.1 栽培季節(jié)的選擇 |
3.2.2 培養(yǎng)基配方 |
3.2.3 含水量對比試驗(yàn) |
3.2.4 滅菌時(shí)間對菌袋成功率和節(jié)能情況的影響試驗(yàn) |
3.2.5 菌袋擺放密度的研究 |
3.2.6 栽培管理技術(shù)的研究 |
3.2.7 病蟲害及雜菌的綜合防治 |
3.3 結(jié)果與分析 |
3.3.1 不同培養(yǎng)基配方對平菇菌絲生長情況的影響 |
3.3.2 不同培養(yǎng)基配方對平菇子實(shí)體生物學(xué)特性的影響 |
3.3.3 不同培養(yǎng)基配方對平菇生物轉(zhuǎn)化率的影響 |
3.3.4 最佳培養(yǎng)基配方的綜合評定 |
3.3.5 培養(yǎng)基最佳含水量的研究 |
3.3.6 滅菌時(shí)間對菌袋成功率和節(jié)能情況的影響試驗(yàn) |
3.3.7 菌袋擺放密度的研究 |
3.3.8 發(fā)菌階段各環(huán)境因子對菌絲的影響 |
3.3.9 出菇階段環(huán)境因子對平菇子實(shí)體的影響 |
3.3.10 雜菌及病蟲害的綜合防治方法 |
3.4 小結(jié)與討論 |
3.4.1 培養(yǎng)基配方對平菇栽培的影響 |
3.4.2 培養(yǎng)基最佳含水量的研究 |
3.4.3 滅菌時(shí)間對菌袋成功率和節(jié)能情況的綜合分析 |
3.4.4 菌袋擺放密度的綜合分析 |
3.4.5 發(fā)菌階段各環(huán)境因子對菌絲的影響 |
3.4.6 各環(huán)境因子對子實(shí)體生長階段的影響 |
3.4.7 病蟲害及雜菌對平菇栽培的影響 |
結(jié)論 |
參考文獻(xiàn) |
致謝 |
作者簡介 |
(10)草菇菌種質(zhì)量控制技術(shù)研究(論文提綱范文)
中文摘要 |
ABSTRACT |
引言 |
第一章 文獻(xiàn)綜述 |
1 草菇概述 |
2 食用菌菌種質(zhì)量評價(jià) |
3 優(yōu)質(zhì)菌種生產(chǎn)技術(shù)研究 |
4 菌種純度及其檢驗(yàn)方法研究 |
4.1 細(xì)菌污染及其檢驗(yàn)方法研究 |
4.2 病毒侵染及其檢驗(yàn)方法研究 |
4.3 霉菌污染及其檢驗(yàn)方法研究 |
5 菌種活力及其檢測指標(biāo)研究 |
5.1 菌種活力與菌絲生長狀況關(guān)系研究 |
5.2 菌種活力與生理生化活性的關(guān)系研究 |
5.3 菌種活力與其他因素的關(guān)系研究 |
第二章 菌種生產(chǎn)技術(shù)研究 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 儀器 |
1.4 實(shí)驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 不同栽培料配方的菌種對草菇產(chǎn)量的影響 |
2.2 不同栽培料含水量的菌種對草菇產(chǎn)量的影響 |
2.3 不同栽培料酸堿度的菌種對草菇產(chǎn)量的影響 |
2.4 不同培養(yǎng)溫度的菌種對草菇產(chǎn)量的影響 |
2.5 不同保藏時(shí)間的菌種對草菇產(chǎn)量的影響 |
3 討論與小結(jié) |
第三章 菌種純度檢測技術(shù)研究 |
第一節(jié) 隱性細(xì)菌的檢測 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 藥品與試劑 |
1.4 儀器 |
1.5 實(shí)驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 菌種瓶細(xì)菌隱性污染的形成 |
2.2 平板劃線法及其靈敏度檢測結(jié)果 |
2.3 液體培養(yǎng)法及其靈敏度檢測結(jié)果 |
2.4 煮沸-PCR 法及其靈敏度檢測結(jié)果 |
3 討論與小結(jié) |
第二節(jié) 病毒的檢測 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 藥品與試劑 |
1.4 儀器 |
1.5 實(shí)驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 疑似dsRNA 病毒提取物電泳結(jié)果 |
2.2 疑似dsRNA 病毒提取物的酶解結(jié)果 |
3 討論與小結(jié) |
第三節(jié) 霉菌污染的檢測 |
1 材料與方法 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 儀器 |
1.4 實(shí)驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 霉菌污染的菌種瓶 |
2.2 菌種霉菌污染的檢測結(jié)果 |
2.3 霉菌孢子平板法靈敏度檢測 |
3 討論與小結(jié) |
第四章 菌種活力檢測指標(biāo)研究 |
1 實(shí)驗(yàn)材料 |
1.1 供試菌株 |
1.2 培養(yǎng)基 |
1.3 藥品與試劑 |
1.4 設(shè)備 |
1.5 實(shí)驗(yàn)方法 |
2 結(jié)果與分析 |
2.1 不同保藏時(shí)間的菌種萌發(fā)后的菌落形態(tài)觀察和萌發(fā)速度測定 |
2.2 不同保藏時(shí)間菌種的生理生化指標(biāo)測定結(jié)果 |
2.2.1 淀粉酶活性測定結(jié)果 |
2.2.2 纖維素活性測定結(jié)果 |
2.2.3 蛋白酶活性測定結(jié)果 |
2.2.4 木聚糖酶活性測定結(jié)果 |
2.2.5 酸性磷酸酶活性測定結(jié)果 |
2.2.6 多酚氧化酶活性測定結(jié)果 |
2.2.7 過氧化物酶活性測定結(jié)果 |
2.2.8 超氧化物歧化酶活性測定結(jié)果 |
2.2.9 丙二醛含量測定結(jié)果 |
2.2.10 pH 值測定結(jié)果 |
2.3 不同保藏時(shí)間菌種的細(xì)胞核熒光染色觀察 |
2.3.1 不同保藏時(shí)間菌種的細(xì)胞核數(shù)目統(tǒng)計(jì) |
2.3.2 不同保藏時(shí)間菌種有核細(xì)胞的比例統(tǒng)計(jì) |
2.4 不同保藏時(shí)間菌種的總RNA 提取 |
2.4.1 不同方法提取草菇栽培料菌種總RNA |
2.4.2 不同保藏時(shí)間菌種的總RNA 提取結(jié)果 |
2.5 菌種活力指標(biāo)與產(chǎn)量相關(guān)性分析 |
3 討論與小結(jié) |
參考文獻(xiàn) |
附錄1:不同栽培料配方菌種瓶圖片 |
附錄2:不同培養(yǎng)溫度菌種瓶圖片 |
附錄3:不同栽培料含水量菌種瓶圖片 |
附錄4:不同栽培料酸堿度菌種瓶圖片 |
附錄5:不同保藏時(shí)間菌種瓶圖片 |
附錄6:不同保藏時(shí)間菌種萌發(fā)后生長管圖片 |
致謝 |
四、怎樣鑒別平菇菌種的優(yōu)劣(論文參考文獻(xiàn))
- [1]滑菇次級代謝產(chǎn)物的挖掘[D]. 向巧. 昆明理工大學(xué), 2021
- [2]不同黑木耳品種種質(zhì)鑒定及優(yōu)良菌株篩選研究[D]. 史靈燕. 河北工程大學(xué), 2019(07)
- [3]平菇菌株提純復(fù)壯技術(shù)應(yīng)用效果研究[D]. 李云夢. 河北工程大學(xué), 2018(05)
- [4]蘆竹種質(zhì)資源、繁殖及其栽培食用菌研究[D]. 林輝. 福建農(nóng)林大學(xué), 2017(05)
- [5]平菇優(yōu)良菌株的選育及評價(jià)[D]. 鄭偉. 河北工程大學(xué), 2017(05)
- [6]平菇菌種優(yōu)劣鑒別[J]. 王平. 農(nóng)村新技術(shù), 2016(05)
- [7]白靈菇原生質(zhì)體育種及遠(yuǎn)緣雜交育種的研究[D]. 張亞嬌. 福建農(nóng)林大學(xué), 2015(01)
- [8]平菇菌種液氮保藏技術(shù)的優(yōu)化及保藏效果鑒定[D]. 韓芹芹. 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué), 2012(07)
- [9]耐高溫型平菇菌株篩選與關(guān)鍵栽培技術(shù)研究[D]. 劉國宇. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院, 2012(10)
- [10]草菇菌種質(zhì)量控制技術(shù)研究[D]. 張麗蓉. 福建農(nóng)林大學(xué), 2011(11)
標(biāo)簽:平菇論文; 原生質(zhì)體論文; 選擇性培養(yǎng)基論文; 性狀分離論文; 草菇論文;