一、氣相色譜法直接測(cè)定茶葉中的咖啡因和茶堿（論文文獻(xiàn)綜述）
袁治倩,傅春燕,曾偉,龍一鳴,王婷[1]（2021）在《藥學(xué)專(zhuān)業(yè)實(shí)踐教學(xué)“茶葉中咖啡因的提取與含量測(cè)定”的設(shè)計(jì)》文中研究表明"茶葉中咖啡因的提取"是藥學(xué)專(zhuān)業(yè)有機(jī)化學(xué)課程實(shí)踐教學(xué)中的一個(gè)很經(jīng)典的實(shí)驗(yàn),"茶葉中咖啡因的含量測(cè)定"在儀器分析課程實(shí)踐教學(xué)中可設(shè)計(jì)成多種分析方法與手段進(jìn)行,并且學(xué)生學(xué)以致用,創(chuàng)造性地應(yīng)用到創(chuàng)新性實(shí)踐項(xiàng)目中,使教學(xué)效果得以升華。本文具體介紹"茶葉中咖啡因的提取與含量測(cè)定"在藥學(xué)專(zhuān)業(yè)實(shí)踐教學(xué)中的設(shè)計(jì),以及大學(xué)生創(chuàng)新項(xiàng)目設(shè)計(jì)的實(shí)踐方案,旨在說(shuō)明教師良好的實(shí)踐教學(xué)能為學(xué)生自主學(xué)習(xí)和探索創(chuàng)造良好的科學(xué)氛圍。
宋小霞[2]（2020）在《液質(zhì)聯(lián)用法測(cè)定馬尿液和血液中茶堿殘留》文中研究表明茶堿為甲基黃嘌呤類(lèi)化合物,通過(guò)舒張呼吸道平滑肌進(jìn)而提高氧氣攝入量,同時(shí)興奮中樞神經(jīng)進(jìn)而提高運(yùn)動(dòng)成績(jī)。同時(shí)又是違禁藥物咖啡因主要代謝產(chǎn)物和共性化合物,因此茶堿成為速度賽馬最常被檢出的違禁藥物之一。為建立快速、準(zhǔn)確、高靈敏度的茶堿殘留檢測(cè)方法,完善茶堿自初篩到確證的定量方法,填補(bǔ)內(nèi)地馬興奮劑檢測(cè)空白,促使我國(guó)賽馬興奮劑檢測(cè)與國(guó)際水平接軌,本研究對(duì)其進(jìn)行了系統(tǒng)性的方法開(kāi)發(fā)。本實(shí)驗(yàn)選擇氘代茶堿作為內(nèi)標(biāo)物,固相萃取法為樣本前處理方法,液相色譜串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜儀（Liquid Chromatography-tandem Mass Spectrometry,簡(jiǎn)稱(chēng)LC-MS/MS）為檢測(cè)手段,建立馬尿液和血液中茶堿殘留檢測(cè)方法。本實(shí)驗(yàn)首先建立茶堿及內(nèi)標(biāo)物儀器檢測(cè)方法,然后對(duì)樣品前處理流程進(jìn)行細(xì)致優(yōu)化,最后進(jìn)行方法學(xué)考察。方法學(xué)數(shù)據(jù)結(jié)果如下:茶堿在尿液和血液中檢測(cè)限分別為0.75ng.mL-1和0.30 ng·mL-1,定量限為 2.50ng·mL-1 和 1.00ng·mL-1;茶堿在尿液 2.50ng·mL-1～100.00ng·mL-1線性范圍內(nèi)及在血液1.00ng·mL-1～100.00ng·mL-1線性范圍內(nèi)線性相關(guān)系數(shù)r2均大于0.999;在尿液中提取回收率為65%以上,在血液中高達(dá)97%;在尿液和血液中相對(duì)回收率分別是94.85%～116.25%,98.93%～114.49%;批內(nèi)精密度RSD均小于3.81%,批間精密度RSD不大于15.53%;血清基質(zhì)對(duì)茶堿離子化有較強(qiáng)抑制作用,而尿液基質(zhì)的抑制作用較弱。上述結(jié)果表明該方法操作簡(jiǎn)單,靈敏度高,結(jié)果可靠完全適用馬興奮劑中茶堿殘留的定量確證。
韓燕禎[3]（2020）在《高效毛細(xì)管電泳與前沿核酸檢測(cè)技術(shù)在衛(wèi)生分析中的應(yīng)用》文中研究說(shuō)明第一部分高效毛細(xì)管電泳法測(cè)定游泳池中尿液指示物乙酰磺胺酸鉀目的:建立測(cè)定游泳池水中新型尿液指示物乙?；前匪徕浐康母咝?xì)管電泳新方法,并成功應(yīng)用于泳池水中乙?；前匪徕浀亩糠治?。方法:采用內(nèi)壁無(wú)涂層熔融石英毛細(xì)管（60.2 cm×75μm,有效長(zhǎng)度50 cm）,緩沖液為10 mmol/L的硼砂溶液（p H=9.30）,分離電壓為24 k V,進(jìn)樣時(shí)間為20 s,檢測(cè)波長(zhǎng)為226 nm。取30 m L游泳池水樣過(guò)濾,經(jīng)固相萃取凈化富集后進(jìn)樣分析。結(jié)果:在優(yōu)化條件下,乙?；前匪徕浽?.2～100.0μg/m L濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系（r=0.9998）,檢出限為50.0 ng/m L,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD）為1.8%,加標(biāo)回收率在96.0%～103.6%之間。結(jié)論:該方法準(zhǔn)確可靠,適用于游泳池水樣中乙酰磺胺酸鉀的檢測(cè)。第二部分膠束電動(dòng)毛細(xì)管色譜法測(cè)定血漿中帕金森病的早期診斷標(biāo)志物–咖啡因及其主要代謝物目的:建立測(cè)定血漿中咖啡因及其主要代謝物–副黃嘌呤、可可堿和茶堿的膠束電動(dòng)毛細(xì)管色譜法,用于臨床輔助早期診斷帕金森病。方法:采用內(nèi)壁無(wú)涂層熔融石英毛細(xì)管（60 cm×75μm,有效長(zhǎng)度50 cm）,緩沖液為35 mmol/L的磷酸鹽溶液–25 mmol/L十二烷基硫酸鈉溶液（p H=10.5）,分離電壓為15 k V,進(jìn)樣時(shí)間為15 s,檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm。1 m L血漿樣品經(jīng)固相萃取凈化濃縮后進(jìn)樣電泳分析。結(jié)果:在優(yōu)化條件下,咖啡因在0.5～100.0μg/m L濃度范圍,及其三種主要代謝物分別在0.4～100.0μg/m L、0.4～100.0μg/m L和0.3～100.0μg/m L濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性（r>0.9996）,檢出限在4.0～7.5 ng/m L,加標(biāo)回收率在88.0%～105.9%之間,RSD<8.0%（n=5）。結(jié)論:該方法準(zhǔn)確可靠,適用于血漿中咖啡因及其三種主要代謝物的檢測(cè),對(duì)帕金森病早期診斷提供了有效輔助支持。第三部分實(shí)時(shí)熒光RT-RPA法快速檢測(cè)食品,水和生物樣本中諾如病毒目的:建立快速檢測(cè)諾如病毒的等溫實(shí)時(shí)熒光反轉(zhuǎn)錄重組酶聚合酶（RT-RPA）新方法。方法:基于GⅡ型諾如病毒的高度保守區(qū)域ORF1–ORF2連接處基因,設(shè)計(jì)了GⅡ型諾如病毒通用特異性引物和Exo探針,采用便攜式等溫?cái)U(kuò)增儀GenieⅢ實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)核酸擴(kuò)增結(jié)果,39℃20 min可完成樣本核酸檢測(cè)。結(jié)果:RT-RPA方法能夠特異性擴(kuò)增GⅡ型諾如病毒,而對(duì)GⅠ型諾如病毒、甲肝病毒、手足口病毒、腺病毒等均無(wú)擴(kuò)增。以體外轉(zhuǎn)錄的No Vs GⅡ型RNA作為模板,檢測(cè)限可達(dá)1.66×102拷貝/μL。實(shí)際樣本分析顯示,靈敏性為96%,特異性為100%。結(jié)論:該方法簡(jiǎn)便快速,實(shí)際適用性強(qiáng),為環(huán)境和臨床樣本諾如病毒的監(jiān)測(cè)及疾病防控提供了有力支持。第四部分多重微滴數(shù)字PCR法分離檢測(cè)食品,水和生物樣本中GⅠ,GⅡ型諾如病毒和甲肝病毒目的:建立分離及同時(shí)快速檢測(cè)GⅠ,GⅡ型諾如病毒和甲肝病毒的多重微滴數(shù)字PCR法。方法:參考標(biāo)準(zhǔn)ISO 15216-2（2019）,合成GⅠ,GⅡ型諾如病毒及甲肝病毒的特異性引物和探針,采用探針比例法,以構(gòu)建的三種病毒的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板,優(yōu)化確定dd PCR反應(yīng)中的探針濃度,PCR擴(kuò)增程序退火溫度,退火/延伸時(shí)間,并進(jìn)行方法的線性范圍、特異性、靈敏性及精密度等驗(yàn)證。結(jié)果:確定dd PCR反應(yīng)中的最佳引物探針濃度為900 nmol/L和450nmol/L,退火溫度為59℃,退火/延伸時(shí)間1 min。諾如病毒和甲肝病毒質(zhì)粒濃度范圍在4～500拷貝/μL（20～2500拷貝/20μL dd PCR反應(yīng)液）時(shí),dd PCR方法線性相關(guān)系數(shù)均大于0.99。方法的定量限為4拷貝/μL（20拷貝/20μL dd PCR反應(yīng)液）,檢出限:諾如病毒GⅡ型和甲肝病毒為5拷貝/20μL dd PCR反應(yīng)液,諾如病毒GⅠ型為7.5拷貝/20μL dd PCR反應(yīng)液。結(jié)論:建立的dd PCR方法特異性良好,對(duì)其他病毒無(wú)擴(kuò)增,可用于實(shí)際樣品GⅠ,GⅡ型諾如病毒和甲肝病毒的同時(shí)快速定量檢測(cè)。
劉騰飛,楊代鳳,董明輝,徐琪,趙佳昕[4]（2020）在《碳納米管在茶葉品質(zhì)與安全檢測(cè)中的應(yīng)用進(jìn)展》文中研究表明茶葉是世界上主要的飲料作物之一,具有獨(dú)特的香氣、藥用和保健功效,深受消費(fèi)者喜愛(ài)。隨著公眾營(yíng)養(yǎng)和健康意識(shí)的提高,茶葉的品質(zhì)和安全問(wèn)題越來(lái)越受到關(guān)注,國(guó)內(nèi)外對(duì)此開(kāi)展了大量的研究工作。由于茶葉種類(lèi)繁多、成分復(fù)雜,給茶葉中各類(lèi)營(yíng)養(yǎng)成分和危害因子的檢測(cè)分析帶來(lái)了困難和挑戰(zhàn)。碳納米管是國(guó)內(nèi)外廣泛關(guān)注的一類(lèi)納米碳材料,由于其特殊的結(jié)構(gòu)和優(yōu)異的理化性能,近年來(lái)在茶葉質(zhì)量安全檢測(cè)領(lǐng)域被廣范應(yīng)用。本文簡(jiǎn)述了碳納米管的類(lèi)型和特點(diǎn),論述了近幾年碳納米管在茶葉品質(zhì)與安全檢測(cè)領(lǐng)域應(yīng)用的相關(guān)進(jìn)展,以期為今后開(kāi)展相關(guān)研究提供參考。
鄧慧蕓[5]（2019）在《磁性表面分子印跡微球的制備、表征及對(duì)咖啡因的分離分析研究》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理咖啡因又名咖啡堿,在茶葉、咖啡、茶飲料與功能飲料中含量較高。少量攝入咖啡因可提神醒腦,但過(guò)量或長(zhǎng)期攝入將影響人體健康,誘發(fā)一系列疾病,因此,有效分離分析咖啡因,對(duì)保障食品安全非常重要。針對(duì)茶葉等復(fù)雜樣品中咖啡因分離分析困難的問(wèn)題,本文以咖啡因?yàn)槟０?采用表面印跡聚合法制備了磁性介孔硅基表面分子印跡微球（MMIPs）,通過(guò)其結(jié)構(gòu)性能表征、吸附與應(yīng)用研究發(fā)現(xiàn),獲得的MMIPs結(jié)構(gòu)層次清晰、粒徑均一、鍵合牢固、吸附性能優(yōu)越,能夠從復(fù)雜樣品中特異性識(shí)別咖啡因,不僅可用于咖啡因的納米銀比色分析與HPLC分析,還可用于咖啡因的分離脫除。主要研究結(jié)果如下:（1）磁性介孔硅基表面分子印跡微球的制備與表征利用表面分子印跡技術(shù),以球形納米Fe304為載體,咖啡因?yàn)槟０宸肿印ⅵ?甲基丙烯酸為功能單體、乙二醇二甲基丙烯酸酯為交聯(lián)劑、偶氮異丁腈為引發(fā)劑,成功制備了磁性表面分子印跡微球。通過(guò)透射電鏡（TEM）、傅里葉變換紅外光譜儀（FT-IR）、振動(dòng)樣品磁強(qiáng)測(cè)定（VSM）、粒徑分析、BET 比表面積測(cè)定、熱重分析（TGA）、X射線衍射（XRD）對(duì)聚合物結(jié)構(gòu)和性能進(jìn)行了表征,結(jié)果表明該表面分子印跡微球經(jīng)過(guò)雙鍵修飾和印跡層包覆后,結(jié)構(gòu)層次清楚,鍵合牢固,表面多孔,而且依然具有超順磁性,在外加磁場(chǎng)的作用下極易聚集,可大大提高吸附操作后的液固分離效率。（2）磁性介孔硅基表面分子印跡微球?qū)Х纫虻奶禺愋宰R(shí)別研究通過(guò)對(duì)制備的MMIPs進(jìn)行靜態(tài)吸附、動(dòng)態(tài)吸附和選擇性吸附試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)MMIPs和非印跡微球（MNIPs）對(duì)咖啡因的熱力學(xué)吸附過(guò)程都是速率受限的單分子層吸附過(guò)程,且MMIPs的飽和吸附量（37.49mg/g）是MNIPs（5.24mg/g）的7倍左右,吸附性能優(yōu)越;MMIPs和MNIPs對(duì)咖啡因的動(dòng)力學(xué)吸附行為符合準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程,存在一個(gè)最大吸附速率。在相同條件下,咖啡因初始濃度為0.3 mg/mL時(shí),MMIPs對(duì)咖啡因的吸附量（28.75 mg/g）明顯高于其他結(jié)構(gòu)類(lèi)似物（黃嘌呤、茶堿、可可堿）,而MNIPs對(duì)咖啡因的吸附量（4.04 mg/g）和其他類(lèi)似物的則非常接近,MMIPs的印跡因子α=7.12,分離因子β咖啡因/黃嘌呤=6.01,β咖啡因/可可堿= 3.40,β咖啡因/茶堿=3.76,表明制得的磁性分子印跡微球識(shí)別咖啡因的特異性較強(qiáng)。（3）磁性介孔硅基表面分子印跡微球-納米銀比色法對(duì)飲料中咖啡因的快速檢測(cè)利用納米銀（AgNPs）溶液和分析物之間的相互作用后的顏色變化,可對(duì)分析物進(jìn)行快速顯色分析,但對(duì)復(fù)雜樣品選擇性不強(qiáng),采用磁性分子印跡微球進(jìn)行前處理可大大加強(qiáng)AgNPs顯色的選擇性。通過(guò)還原法制備了 AgNPs溶液,獲得其最佳制備條件為:1mmol/LAgN03溶液,2mmol/LNaBH4溶液,n（AgN03）:n（NaBH4）=1:5,用冰水配制溶液,反應(yīng)時(shí)間為20 min,攪拌速度為1400 r/min。采用咖啡因-MMIPs對(duì)飲料進(jìn)行前處理,將咖啡因富集分離后,通過(guò)AgNPs比色法快速分析其含量。當(dāng)咖啡因濃度為5～30 mg/L時(shí),可用肉眼進(jìn)行快速篩查和半定量分析;當(dāng)濃度為0.1～5 mg/L可使用紫外-可見(jiàn)光譜法,在λmax=393 nm處進(jìn)行定量分析,其檢測(cè)結(jié)果與HPLC直接分析非常吻合。因此,將MMIPs的前處理技術(shù)與AgNPs的比色分析加以結(jié)合,可用于飲料中咖啡因含量的快速比色分析。（4）磁性介孔硅基表面分子印跡微球?qū)Σ枞~中咖啡因的分離脫除研究首先制備了以咖啡因?yàn)槟０宓腗MIPs萃取小柱（體積:1mL,填料質(zhì)量:50 mg）,并對(duì)MMIPs萃取小柱的淋洗和洗脫條件進(jìn)行優(yōu)化,其最佳淋洗液為氯仿,洗脫液為V甲醇:V乙酸=9:1,洗脫體積為10mL。同時(shí)對(duì)萃取小柱脫除法和振搖吸附-磁性分離脫除法進(jìn)行了加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn),萃取小柱的回收率85.76%～94.57%,振搖吸附-磁性分離脫除法的回收率為89.28%～97.93%,后者脫除回收率更高。通過(guò)比較兩種方法對(duì)茶飲料中咖啡因的脫除率,發(fā)現(xiàn)萃取小柱脫除率為86.30%,振搖吸附-磁性分離脫除法的脫除率達(dá)93.32%,后者脫除率也更高,說(shuō)明了磁性表面分子印跡微球,在免去制備萃取柱的繁瑣步驟的同時(shí),又保證了較高的吸附效率與脫除率。
王樂(lè),賈宗平,趙文成,楊亞飛[6]（2019）在《咖啡因檢測(cè)方法研究進(jìn)展》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理咖啡因（Caffeine）,屬生物堿性化合物,主要分布于茶葉、咖啡豆等植物的幼嫩組織部位。因作用于人體中樞神經(jīng)系統(tǒng),使機(jī)體產(chǎn)生興奮作用,被廣泛用于藥物及食品中。作為國(guó)家管制精神藥品物質(zhì)的咖啡因,其管制力度遠(yuǎn)低于其他濫用藥物,但近些年由于咖啡因攝入過(guò)量而造成的死傷案例逐漸增多。因此,研究咖啡因的中毒機(jī)理及檢測(cè)方法逐步成為國(guó)內(nèi)外的研究重點(diǎn),尤其是其檢測(cè)方法的研究在食品安全及法醫(yī)鑒定中均具有重要的意義。為全面了解咖啡因的理化性質(zhì)及在食品、藥物與毒品研究領(lǐng)域中的定性定量方法,概述了咖啡因的性質(zhì)及研究發(fā)展過(guò)程,及咖啡因的檢測(cè)方法和應(yīng)用,從光譜法、色譜法、電泳法、聯(lián)用技術(shù)四個(gè)方面介紹了咖啡因檢測(cè)的進(jìn)展,重點(diǎn)討論了幾類(lèi)現(xiàn)代分析技術(shù)用于檢測(cè)咖啡因的實(shí)驗(yàn)條件和效果。結(jié)合實(shí)際應(yīng)用,指出當(dāng)前研究工作中的優(yōu)劣,并提出有待進(jìn)一步研究的方向。
陳書(shū)清[7]（2018）在《苦茶堿的分離制備以及對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷的保護(hù)作用》文中研究說(shuō)明谷氨酸（Glutamate,Glu）是中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)含量最高、作用最廣泛的興奮性氨基酸。當(dāng)大腦出現(xiàn)缺血缺氧損傷時(shí),細(xì)胞外Glu濃度會(huì)過(guò)高,并會(huì)和Glu受體過(guò)度結(jié)合,導(dǎo)致神經(jīng)元死亡?？嗖鑹A（Theacrine,TC）是主要存在于苦茶中的嘌呤生物堿,具有鎮(zhèn)靜催眠、抗抑郁和消炎鎮(zhèn)痛等生理功效。本文研究了運(yùn)用制備色譜法分離制備苦茶中的TC的方法,以HT22細(xì)胞為研究對(duì)象,建立了Glu誘導(dǎo)損傷的細(xì)胞模型,探討了TC對(duì)Glu誘導(dǎo)HT22細(xì)胞損傷的保護(hù)作用以及可能機(jī)制。具體研究結(jié)果如下:（1）以制備TC的純度、回收率、保留時(shí)間和分離度為考察指標(biāo),研究了不同的流動(dòng)相比例、上樣濃度、上樣體積以及流動(dòng)相流速對(duì)分離制備過(guò)程的影響。TC的最佳制備色譜程序?yàn)?B相35%平衡1BV（一個(gè)柱體積）,手動(dòng)進(jìn)樣,1.01-1.50BV B相35%,1.51-3.30BV B相45%,上樣濃度為10mg/ml,上樣體積為500μl,流速為2ml/min。分離得到的物質(zhì)經(jīng)過(guò)UPLC-MS/MS鑒定,確定為T(mén)C。（2）以HT22細(xì)胞為研究對(duì)象,5mmol/L的Glu建立細(xì)胞損傷模型,發(fā)現(xiàn)TC和A2A受體拮抗劑SCH58261對(duì)Glu誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷具有保護(hù)作用,能夠明顯改善細(xì)胞形態(tài),提高細(xì)胞存活率,并且具有一定的濃度依賴(lài)性。（3）Glu誘導(dǎo)HT22細(xì)胞能夠使SOD活力下降,MDA含量上升,TC能夠顯著性提高Glu誘導(dǎo)HT22細(xì)胞的SOD活力,顯著性降低MDA含量,并表現(xiàn)出一定的濃度依賴(lài)性。（4）通過(guò)觀察Hoechst 33342染色后HT22細(xì)胞的形態(tài)以及流式Annexin V-FITC/PI雙染法檢測(cè)細(xì)胞凋亡率,發(fā)現(xiàn)Glu誘導(dǎo)可以使HT22細(xì)胞產(chǎn)生明顯的凋亡形態(tài),細(xì)胞凋亡率明顯增加,而加入TC后可以明顯改善Glu誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞的凋亡形態(tài)、降低細(xì)胞凋亡率,并表現(xiàn)出一定的濃度依賴(lài)性。綜上所述,制備色譜能夠有效分離制備苦茶中的TC,并且TC能夠抑制Glu誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷,其作用機(jī)制為:TC的保護(hù)作用可能與抗氧化和抗凋亡有關(guān),也可能與TC作為A2A受體拮抗劑有關(guān)。
石亞亭[8]（2017）在《磁性固相萃取—色譜法在食品和環(huán)境檢測(cè)中的應(yīng)用研究》文中提出隨著經(jīng)濟(jì)社會(huì)的快速發(fā)展和人類(lèi)物質(zhì)生活的不斷豐富,隨之而來(lái)的是環(huán)境污染和食品安全等問(wèn)題的頻繁發(fā)生,這嚴(yán)重影響著人類(lèi)的生命和健康情況,已成為全世界關(guān)注的兩大國(guó)際社會(huì)問(wèn)題,因此對(duì)環(huán)境和食品領(lǐng)域的大力監(jiān)管已成為刻不容緩的任務(wù)之一。但由于環(huán)境和食品樣品存在基質(zhì)成分極其復(fù)雜、有害物質(zhì)含量低、干擾物質(zhì)較多等問(wèn)題,難以通過(guò)儀器直接進(jìn)行測(cè)定,所以在樣品分析之前必須選擇適當(dāng)?shù)姆椒▽?duì)其進(jìn)行預(yù)處理來(lái)實(shí)現(xiàn)目標(biāo)分析物的富集。在眾多用于分離富集的樣品前處理技術(shù)中,磁性固相萃取技術(shù)以其快速簡(jiǎn)便、節(jié)能高效、綠色環(huán)保、易實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化等特點(diǎn)受到廣泛的關(guān)注。本文通過(guò)合成新型磁性納米材料,結(jié)合磁性固相萃取技術(shù),利用高效液相色譜法、氣相色譜法作為檢測(cè)手段對(duì)咖啡和茶葉中的多環(huán)芳烴、環(huán)境水樣中的磺胺和喹諾酮類(lèi)藥物,以及飲料中咖啡因進(jìn)行了含量測(cè)定。本論文的具體研究?jī)?nèi)容如下:1、簡(jiǎn)要介紹了近年來(lái)磁性固相萃取技術(shù)的發(fā)展情況,同時(shí)對(duì)磁性固相萃取的原理和磁性納米材料的結(jié)構(gòu)、制備以及實(shí)際應(yīng)用進(jìn)行了概述。通過(guò)與其它傳統(tǒng)萃取技術(shù)的對(duì)比,分析了磁性固相萃取技術(shù)在分析領(lǐng)域獨(dú)特的優(yōu)越性,并敘述了本論文的研究意義及主要內(nèi)容。2、成功合成了一種新型的聚合離子液體修飾的Fe3O4納米萃取劑（Fe3O4@3-（Trimethoxysilyl）propyl methacrylate@polymerized ionic liquid NPs,Fe3O4@MPS@PIL NPs）,并將其應(yīng)用于磁性固相萃取-高效液相色譜法測(cè)定咖啡和茶葉中七種分子量很大的多環(huán)芳烴。研究了影響萃取率的一些參數(shù),包括溶液的pH、萃取劑用量、解析劑、解析體積、萃取和解析時(shí)間。在最佳條件下,該檢測(cè)方法獲得了良好的線性關(guān)系,R2為0.9987-0.9998,檢出限為0.1-10 ng·L-1。七種多環(huán)芳烴在咖啡和茶葉樣品中的加標(biāo)回收率為87.5%-104.5%,RSD%小于3.7%。此外,本方法也得到了很滿(mǎn)意的重復(fù)性,日內(nèi)及日間的RSD%分別小于3.1%和3.8%。3、進(jìn)一步探究了Fe3O4@MPS@PIL NPs對(duì)環(huán)境樣品中的磺胺和喹諾酮類(lèi)藥物的吸附性能研究。首先,結(jié)合磁性固相萃取-高效液相色譜技術(shù),將該萃取劑應(yīng)用于不同水樣中磺胺類(lèi)（sulfonamides,SAs）和喹諾酮類(lèi)（quinolones,QNs）藥物的含量分析。在最佳條件下,本方法具有良好的靈敏度,檢出限（S/N=3）和定量限（S/N=10）分別為0.2-1.0μg·L–1和0.8-3.4μg·L–1。環(huán)境水樣中磺胺類(lèi)和喹諾酮類(lèi)藥物的加標(biāo)回收率為83.5%-103.0%,RSD小于4.5%。此外,該萃取劑還被應(yīng)用于水環(huán)境中磺胺甲惡唑（sulfamethoxazole,SMX）和氧氟沙星（ofloxacin,OFL）的去除。研究了SMX和OFL與Fe3O4@MPS@PIL NPs萃取劑之間的吸附動(dòng)力學(xué)和吸附熱力學(xué),以此來(lái)評(píng)價(jià)萃取劑的去除性能。分別通過(guò)一階模型、二階模型和Langmuir、Freundlich模型對(duì)去除實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行了評(píng)估。結(jié)果說(shuō)明,吸附過(guò)程遵循二階模型,說(shuō)明吸附過(guò)程為限速步驟;另外,得到了較高的最大吸附量（qmax）值（qmax,SMX=70.35mg·g–1 and qmax,OFL=48.95 mg·g–1）,表明Fe3O4@MPS@PIL NPs萃取劑具有強(qiáng)大的吸附能力。4、基于磁性分子印跡固相萃取技術(shù)（magnetic molecularly imprinted solid-phase extraction,MMISPE）,建立了一種高選擇性、高靈敏性的測(cè)定飲料樣品中咖啡因含量的樣品前處理方法。以茶堿作為模板分子,離子液體作為聚合單體,成功合成了磁性分子印跡聚合材料,該材料對(duì)咖啡因具有較高的吸附能力和選擇性。樣品中的痕量咖啡因通過(guò)磁性分子印跡固相萃取技術(shù)的分離和富集后,經(jīng)過(guò)氣相色譜和離子火焰檢測(cè)器分析和測(cè)定其含量。提出的MMISPE-GC-FID方法的檢出限為0.05μg·m L–1。咖啡因在可口可樂(lè)、百事可樂(lè)、紅牛和黑卡6小時(shí)四種飲料樣品中的加標(biāo)回收率分別為103.1%、96.1%、98.6%、97.8%。
石巖[9]（2016）在《氣相色譜法測(cè)定茶鮮葉中有機(jī)氯和擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥殘留》文中進(jìn)行了進(jìn)一步梳理茶葉具有消除自由基延緩衰老、抑制心血管疾病、預(yù)防癌癥和抑制抵抗細(xì)菌等醫(yī)療保健作用,然而在茶葉種植過(guò)程中,由于受到昆蟲(chóng)的危害,人們大量使用農(nóng)藥,從而產(chǎn)生農(nóng)藥殘留問(wèn)題。近年來(lái),隨著國(guó)外技術(shù)壁壘的提高,尤其是日本肯定列表實(shí)施后,加大了出口殘留檢測(cè)要求,對(duì)我國(guó)茶葉出口檢測(cè)要求更高,然而目前現(xiàn)行的檢測(cè)體系只檢測(cè)成品茶葉,對(duì)茶鮮葉的檢測(cè)還處于空白期,本著檢測(cè)關(guān)口前置,將農(nóng)殘超標(biāo)的茶鮮葉扼殺在生產(chǎn)過(guò)程之前可以有效的降低生產(chǎn)廠家的損失,提升我國(guó)茶葉的質(zhì)量安全,因此加強(qiáng)對(duì)茶鮮葉中農(nóng)藥殘留檢測(cè)具有十分重要的意義。本文對(duì)茶鮮葉中常用的20種有機(jī)氯及擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥的提取、凈化技術(shù)和氣相色譜檢測(cè)條件進(jìn)行了研究,建立了氣相色譜法測(cè)定茶鮮葉中20種有機(jī)氯及擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥的方法。主要研究結(jié)果如下:（1）優(yōu)化色譜條件。通過(guò)對(duì)色譜條件的優(yōu)化,最終確定使用DB-5毛細(xì)管柱（30mm×0.32mm,0.25μm）毛細(xì)管柱,升溫程序:180℃（保持3min）（3℃/min）→240℃（保持27min）,柱流速以2mL/min,進(jìn)樣口溫度250℃,檢測(cè)器使用ECD檢測(cè)器,溫度為280℃,尾吹氣設(shè)為30mL/min,進(jìn)樣量為1μL,分流比5:1。在本實(shí)驗(yàn)選用的梯度洗脫條件下,20種目標(biāo)農(nóng)藥經(jīng)氣相色譜分離,在ECD檢測(cè)器上測(cè)定。20種有機(jī)氯和擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥在5100μg/L范圍內(nèi)線性良好,相關(guān)系數(shù)為0.99810.9998。（2）優(yōu)化了茶鮮葉中農(nóng)藥殘留分析的前處理?xiàng)l件。從提取溶劑的種類(lèi)和用量、提取方法、SPE小柱填料及洗脫溶劑的種類(lèi)和用量六個(gè)方面對(duì)SPE前處理方法進(jìn)行優(yōu)化,最終確定最優(yōu)的SPE前處理方法:加入30mL乙腈,通過(guò)均質(zhì)提取,過(guò)TPT柱凈化,用20 mL乙腈:甲苯（3:1,v/v）溶液淋洗并收集洗脫液,用氮吹濃縮,正己烷定容,過(guò)濾膜,上機(jī)進(jìn)樣測(cè)定。此前處理方法操作快速、簡(jiǎn)單,符合農(nóng)殘多組分檢測(cè)的技術(shù)要求。（3）方法的回收率和精密度實(shí)驗(yàn)。利用上述前處理方法在0.005、0.01、0.02和0.05mg/kg 4個(gè)水平進(jìn)行添加回收率實(shí)驗(yàn),每個(gè)水平重復(fù)5次,茶鮮葉4個(gè)添加濃度平均回收率為73.18%100.91%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.81%9.52%。該方法靈敏度高,準(zhǔn)確度好,符合農(nóng)藥多殘留檢測(cè)的技術(shù)要求,為茶鮮葉檢測(cè)提供了技術(shù)支撐。
武宇晨[10]（2016）在《食品中常用添加劑的高效毛細(xì)管電泳分析方法研究及應(yīng)用》文中指出本論文用MEKC（micellar electrokinetic chromatography,毛細(xì)管膠束電動(dòng)色譜）對(duì)飲料、酸奶、蜜餞、糕點(diǎn)等多種食品中的防腐劑、甜味劑、人工合成色素、奎寧、咖啡因等添加劑以及茶葉中咖啡因、可可堿、茶堿進(jìn)行了定性定量分析。論文分為以下三部分。一、建立了MEKC同時(shí)測(cè)定果汁、酸奶、蜜餞、及可樂(lè)中的6種非糖類(lèi)甜味劑（阿力甜、阿斯巴甜、紐甜、甜菊糖苷、糖精、安賽蜜）,3種酸性防腐劑（山梨酸、苯甲酸、脫氫乙酸）,以及2種生物堿（奎寧、咖啡因）共計(jì)11種添加劑的新方法。本方法以50μm×70 cm（有效長(zhǎng)度為60 cm）未涂層的石英毛細(xì)管為分離通道;以20 mmol/L Na2B4O7+42 mmol/L H3BO3（pH=8.83）+100mmol/L SD（sodium deoxycholate,脫氧膽酸鈉）為分離緩沖溶液。分離電壓為23 kV,進(jìn)樣壓力及時(shí)間為0.5 psi、25 s,檢測(cè)波長(zhǎng)為214 nm。線性相關(guān)系數(shù)大于0.999。該方法檢出限在0.252.5 mg/L之間,加標(biāo)回收率在81.6115.0%之間。方法的日內(nèi)及日間精密度相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于5%。該方法簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確,將其成功地用于英國(guó)弗帕斯實(shí)驗(yàn)室食品分析水平評(píng)估計(jì)劃（Food analysis performance assessment scheme,FAPAS）中巧克力糕點(diǎn)能力驗(yàn)證樣品中的山梨酸、可可堿和咖啡因,均獲滿(mǎn)意結(jié)果,進(jìn)一步驗(yàn)證了本方法的準(zhǔn)確性。在此基礎(chǔ)上測(cè)定了9件樣品,均獲滿(mǎn)意結(jié)果。二、建立了同時(shí)測(cè)定食品中9種人工合成色素的MECK新方法。本方法以50μm×70 cm（有效長(zhǎng)度為60 cm）未涂層的石英毛細(xì)管為分離柱;以V（15mmol/L Na2B4O7+5 mmol/L NaOH（pH=9.96）+5 mmol/Lβ-環(huán)糊精）:V（無(wú)水乙醇）=9:1為分離緩沖溶液。分離電壓為25 k V,214 nm為檢測(cè)波長(zhǎng)。9種色素的檢出限在0.250.5 mg/L之間,質(zhì)量濃度在1.5200 mg/L的范圍內(nèi)與校正峰面積有良好的線性關(guān)系,線性相關(guān)系數(shù)大于0.999。加標(biāo)回收率在92.9104.0%間,方法的日內(nèi)及日間精密度相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD小于5%。該方法適用于糖果、飲料、調(diào)制酒、冰淇淋樣品的分析。三、建立了同時(shí)檢測(cè)茶葉樣品中的咖啡因、可可堿、茶堿的MEKC新方法。該方法以50μm?60.2 cm（有效長(zhǎng)度:50 cm）為分離柱;以V（40 mmol/L Na2B4O7+150 mmol/L H3BO3（pH=8.46）+100 mmol/L SDS+10g/L PEG20 000）:V甲醇=95:5為分離緩沖溶液。分離電壓為23 kV,檢測(cè)波長(zhǎng)為214 nm?？Х纫?、可可堿、茶堿的檢出限分別為0.5、0.2、0.5 mg/L。質(zhì)量濃度在1.5100.0 mg/L的范圍內(nèi)與校正峰面積呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)大于0.999。該方法回收率在90.2110.2%之間,方法的日內(nèi)及日間精密度相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD小于5%。將該方法用于5件綠茶樣品的分析,由于綠茶中茶堿含量低于檢出限,未能檢測(cè)出茶葉中的茶堿,其余兩組組分均獲滿(mǎn)意結(jié)果。
二、氣相色譜法直接測(cè)定茶葉中的咖啡因和茶堿（論文開(kāi)題報(bào)告）
（1）論文研究背景及目的
此處內(nèi)容要求：
首先簡(jiǎn)單簡(jiǎn)介論文所研究問(wèn)題的基本概念和背景，再而簡(jiǎn)單明了地指出論文所要研究解決的具體問(wèn)題，并提出你的論文準(zhǔn)備的觀點(diǎn)或解決方法。
寫(xiě)法范例：
本文主要提出一款精簡(jiǎn)64位RISC處理器存儲(chǔ)管理單元結(jié)構(gòu)并詳細(xì)分析其設(shè)計(jì)過(guò)程。在該MMU結(jié)構(gòu)中,TLB采用叁個(gè)分離的TLB,TLB采用基于內(nèi)容查找的相聯(lián)存儲(chǔ)器并行查找,支持粗粒度為64KB和細(xì)粒度為4KB兩種頁(yè)面大小,采用多級(jí)分層頁(yè)表結(jié)構(gòu)映射地址空間,并詳細(xì)論述了四級(jí)頁(yè)表轉(zhuǎn)換過(guò)程,TLB結(jié)構(gòu)組織等。該MMU結(jié)構(gòu)將作為該處理器存儲(chǔ)系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)的一個(gè)重要組成部分。
（2）本文研究方法
調(diào)查法：該方法是有目的、有系統(tǒng)的搜集有關(guān)研究對(duì)象的具體信息。
觀察法：用自己的感官和輔助工具直接觀察研究對(duì)象從而得到有關(guān)信息。
實(shí)驗(yàn)法：通過(guò)主支變革、控制研究對(duì)象來(lái)發(fā)現(xiàn)與確認(rèn)事物間的因果關(guān)系。
文獻(xiàn)研究法：通過(guò)調(diào)查文獻(xiàn)來(lái)獲得資料，從而全面的、正確的了解掌握研究方法。
實(shí)證研究法：依據(jù)現(xiàn)有的科學(xué)理論和實(shí)踐的需要提出設(shè)計(jì)。
定性分析法：對(duì)研究對(duì)象進(jìn)行“質(zhì)”的方面的研究，這個(gè)方法需要計(jì)算的數(shù)據(jù)較少。
定量分析法：通過(guò)具體的數(shù)字，使人們對(duì)研究對(duì)象的認(rèn)識(shí)進(jìn)一步精確化。
跨學(xué)科研究法：運(yùn)用多學(xué)科的理論、方法和成果從整體上對(duì)某一課題進(jìn)行研究。
功能分析法：這是社會(huì)科學(xué)用來(lái)分析社會(huì)現(xiàn)象的一種方法，從某一功能出發(fā)研究多個(gè)方面的影響。
模擬法：通過(guò)創(chuàng)設(shè)一個(gè)與原型相似的模型來(lái)間接研究原型某種特性的一種形容方法。
三、氣相色譜法直接測(cè)定茶葉中的咖啡因和茶堿（論文提綱范文）
（1）藥學(xué)專(zhuān)業(yè)實(shí)踐教學(xué)“茶葉中咖啡因的提取與含量測(cè)定”的設(shè)計(jì)（論文提綱范文）
| 1 在有機(jī)化學(xué)實(shí)踐課程中的設(shè)計(jì) |
| 1.1 傳統(tǒng)提取純化分離方法 |
| 1.1.1 升華法[6] |
| 1.1.2 萃取法[6] |
| 1.2 現(xiàn)代提取純化分離方法 |
| 2 在儀器分析實(shí)踐課程中的設(shè)計(jì) |
| 2.1 紫外-可見(jiàn)分光光度法 |
| 2.1.1 對(duì)照品溶液的制備 |
| 2.1.2 供試品溶液的制備 |
| 2.1.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 |
| 2.1.4 含量測(cè)定 |
| 2.2 高效液相色譜法 |
| 2.2.1 咖啡因?qū)φ掌啡芤旱闹苽?/td> |
| 2.2.2 供試品溶液制備 |
| 2.2.3 色譜條件 |
| 2.2.4 儀器精密度考察 |
| 2.2.5 樣品重復(fù)性考察 |
| 2.2.6 工作曲線繪制 |
| 2.2.7 樣品含量測(cè)定 |
| 2.3 氣相色譜法 |
| 2.3.1 內(nèi)標(biāo)溶液制備 |
| 2.3.2 咖啡因?qū)φ掌啡芤旱闹苽?/td> |
| 2.3.3 供試品溶液制備 |
| 2.3.4 色譜條件 |
| 2.3.5 儀器精密度考察 |
| 2.3.6 樣品重復(fù)性考察 |
| 2.3.7 工作曲線繪制 |
| 2.3.8 樣品含量測(cè)定 |
| 3 在創(chuàng)新性實(shí)踐項(xiàng)目中的設(shè)計(jì) |
| 4 結(jié) 語(yǔ) |
（2）液質(zhì)聯(lián)用法測(cè)定馬尿液和血液中茶堿殘留（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 引言 |
| 1.1 研究背景 |
| 1.1.1 國(guó)內(nèi)外賽馬運(yùn)動(dòng)現(xiàn)狀 |
| 1.1.2 國(guó)內(nèi)外馬興奮劑檢測(cè)現(xiàn)狀及危害 |
| 1.1.3 茶堿概述及方法重要性 |
| 1.1.4 建立茶堿檢測(cè)方法依據(jù) |
| 1.2 茶堿藥物作用及作用機(jī)理 |
| 1.2.1 茶堿藥物作用 |
| 1.2.2 茶堿作用機(jī)理 |
| 1.3 茶堿檢測(cè)方法的研究現(xiàn)狀 |
| 1.3.1 前處理方法現(xiàn)狀 |
| 1.3.2 儀器檢測(cè)方法現(xiàn)狀 |
| 1.4 研究目的及意義 |
| 1.4.1 研究目的 |
| 1.4.2 研究意義 |
| 2 儀器檢測(cè)方法的優(yōu)化 |
| 2.1 主要儀器與試劑 |
| 2.2 液相色譜條件優(yōu)化 |
| 2.2.1 色譜柱的選擇 |
| 2.2.2 流動(dòng)相的選擇 |
| 2.2.3 色譜進(jìn)樣量與進(jìn)樣溶劑選擇 |
| 2.3 質(zhì)譜條件優(yōu)化 |
| 2.4 小結(jié) |
| 3 茶堿樣品前處理方法優(yōu)化 |
| 3.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
| 3.1.1 主要儀器 |
| 3.1.2 試劑與材料 |
| 3.1.3 固相萃取柱 |
| 3.1.4 陰性血清及陰性尿液 |
| 3.2 溶液配制 |
| 3.2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制 |
| 3.2.2 加標(biāo)試樣制備 |
| 3.2.3 質(zhì)控樣品制備 |
| 3.3 樣品前處理方法 |
| 3.4 內(nèi)標(biāo)物的選擇 |
| 3.5 樣品前處理方法的優(yōu)化 |
| 3.5.1 固相萃取小柱(SPE)選擇 |
| 3.5.2 生物基質(zhì)酸堿性對(duì)回收率的影響 |
| 3.5.3 淋洗液對(duì)回收率的影響 |
| 3.5.4 洗脫液對(duì)回收率的影響 |
| 3.6 小結(jié) |
| 4 方法學(xué)驗(yàn)證 |
| 4.1 專(zhuān)屬性 |
| 4.2 線性關(guān)系及范圍 |
| 4.3 準(zhǔn)確度和精密度 |
| 4.4 提取回收率與基質(zhì)效應(yīng) |
| 4.5 穩(wěn)定性試驗(yàn) |
| 4.6 小結(jié) |
| 5 全文討論及創(chuàng)新點(diǎn) |
| 5.1 儀器檢測(cè)方法討論 |
| 5.2 樣品前處理方法討論 |
| 5.3 方法學(xué)驗(yàn)證討論 |
| 5.4 本文創(chuàng)新點(diǎn) |
| 6 全文結(jié)論 |
| 致謝 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 作者簡(jiǎn)介 |
（3）高效毛細(xì)管電泳與前沿核酸檢測(cè)技術(shù)在衛(wèi)生分析中的應(yīng)用（論文提綱范文）
| 中文摘要 |
| 英文摘要 |
| 英文縮寫(xiě) |
| 第一部分 高效毛細(xì)管電泳法測(cè)定游泳池中尿液指示物乙?；前匪徕?/td> |
| 前言 |
| 材料與方法 |
| 結(jié)果 |
| 討論 |
| 小結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 第二部分 膠束電動(dòng)毛細(xì)管色譜法測(cè)定血漿中帕金森病的早期診斷標(biāo)志物–咖啡因及其主要代謝物 |
| 前言 |
| 材料與方法 |
| 結(jié)果 |
| 討論 |
| 小結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 第三部分 實(shí)時(shí)熒光RT-RPA法快速檢測(cè)食品,水和生物樣本中諾如病毒 |
| 前言 |
| 材料與方法 |
| 結(jié)果 |
| 討論 |
| 小結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 第四部分 多重微滴數(shù)字PCR法分離檢測(cè)食品,水和生物樣本中GⅠ,GⅡ型諾如病毒和甲肝病毒 |
| 前言 |
| 材料與方法 |
| 結(jié)果 |
| 討論 |
| 小結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 結(jié)論 |
| 綜述 咖啡因及其代謝物的檢測(cè)及應(yīng)用研究進(jìn)展 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
| 個(gè)人簡(jiǎn)歷 |
（4）碳納米管在茶葉品質(zhì)與安全檢測(cè)中的應(yīng)用進(jìn)展（論文提綱范文）
| 1 碳納米管的類(lèi)型和特點(diǎn) |
| 2 碳納米管在茶葉品質(zhì)檢測(cè)中的應(yīng)用 |
| 3 碳納米管在茶葉安全檢測(cè)中的應(yīng)用 |
| 3.1 農(nóng)藥殘留 |
| 3.2 重金屬 |
| 3.3 多氯聯(lián)苯 |
| 3.4 其他有害成分 |
| 4 結(jié)語(yǔ) |
（5）磁性表面分子印跡微球的制備、表征及對(duì)咖啡因的分離分析研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 緒論 |
| 1.1 咖啡因概述 |
| 1.1.1 咖啡因的性質(zhì)及用途 |
| 1.1.2 過(guò)度攝入咖啡因的危害 |
| 1.1.3 咖啡因的分離分析方法及研究進(jìn)展 |
| 1.2 分子印跡概述 |
| 1.2.1 分子印跡技術(shù)的基本原理 |
| 1.2.2 分子印跡聚合物的分類(lèi) |
| 1.2.3 分子印跡材料的制備方法 |
| 1.2.4 分子印跡技術(shù)的應(yīng)用 |
| 1.3 研究?jī)?nèi)容和意義 |
| 第二章 磁性介孔硅基表面分子印跡微球的制備及表征 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 2.2.1 儀器與試劑 |
| 2.2.2 磁性表面分子印跡微球的制備 |
| 2.2.3 磁性介孔硅基表面分子印跡微球的表征 |
| 2.3 結(jié)果與討論 |
| 2.3.1 紅外光譜分析 |
| 2.3.2 透射電鏡分析 |
| 2.3.3 粒徑分析 |
| 2.3.4 振動(dòng)樣品磁強(qiáng)測(cè)定 |
| 2.3.5 熱重分析 |
| 2.3.6 BET比表面積測(cè)定 |
| 2.3.7 X射線衍射分析 |
| 2.4 本章小結(jié) |
| 第三章 磁性介孔硅基表面分子印跡微球?qū)Х纫虻奶禺愋宰R(shí)別研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 3.2.1 儀器與試劑 |
| 3.2.2 磁性介孔硅基表面分子印跡微球?qū)Х纫虻奈綄?shí)驗(yàn) |
| 3.3 結(jié)果與討論 |
| 3.3.1 HPLC標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.3.2 MMIPs對(duì)咖啡因的熱力學(xué)吸附曲線 |
| 3.3.3 MMIPs對(duì)咖啡因的動(dòng)力學(xué)吸附曲線 |
| 3.3.4 MMIPs對(duì)咖啡因的特異選擇性吸附性能 |
| 3.3.5 MMIPs對(duì)黑茶茶湯中咖啡因的吸附 |
| 3.4 本章小結(jié) |
| 第四章 磁性表面分子印跡微球-納米銀比色法對(duì)飲料中咖啡因的快速檢測(cè) |
| 4.1 引言 |
| 4.2 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 4.2.1 儀器與試劑 |
| 4.2.2 納米銀溶液的制備 |
| 4.2.3 MMIPs對(duì)飲料的前處理 |
| 4.2.4 AgNPs比色法和紫外-可見(jiàn)光譜法分析飲料中咖啡因含量 |
| 4.3 結(jié)果與討論 |
| 4.3.1 納米銀溶液的制備條件優(yōu)化 |
| 4.3.2 飲料中咖啡因的加標(biāo)回收率 |
| 4.3.3 MMIPs前處理后飲料中咖啡因含量的AgNPs比色分析 |
| 4.4 本章小結(jié) |
| 第五章 磁性表面分子印跡微球?qū)Σ枞~中咖啡因的分離脫除研究 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 5.2.1 儀器與試劑 |
| 5.2.2 咖啡因脫除萃取小柱的組裝 |
| 5.2.3 淋洗劑的選擇 |
| 5.2.4 洗脫劑的選擇 |
| 5.3 結(jié)果與討論 |
| 5.3.1 咖啡因脫除萃取小柱條件的優(yōu)化 |
| 5.3.2 茶葉中咖啡因萃取小柱脫除與振搖吸附-磁分離脫除效果比較 |
| 5.3.3 脫除茶葉中咖啡因加標(biāo)回收率 |
| 5.4 本章小結(jié) |
| 第六章 結(jié)論與展望 |
| 6.1 結(jié)論 |
| 6.2 展望 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 在學(xué)期間的研究成果 |
| 致謝 |
（6）咖啡因檢測(cè)方法研究進(jìn)展（論文提綱范文）
| 一、引言 |
| 二、光譜法 |
| (一) 紫外光譜法 |
| (二) 紅外光譜法 |
| 三、色譜法 |
| (一) 液相色譜法 |
| (二) 氣相色譜法 |
| 四、聯(lián)用技術(shù) |
| 五、電泳法 |
| 六、研究展望 |
（7）苦茶堿的分離制備以及對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷的保護(hù)作用（論文提綱范文）
| 致謝 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 縮略詞 |
| 第一章 文獻(xiàn)綜述 |
| 1.1 茶葉嘌呤生物堿的提取和分離 |
| 1.1.1 超聲波法 |
| 1.1.2 超臨界CO_2萃取法 |
| 1.1.3 微波法 |
| 1.1.4 色譜分離法 |
| 1.2 苦茶堿的生理功效 |
| 1.2.1 鎮(zhèn)靜催眠 |
| 1.2.2 抗抑郁 |
| 1.2.3 消炎鎮(zhèn)痛 |
| 1.2.4 抗帕金森病作用 |
| 1.2.5 對(duì)脂質(zhì)代謝的作用 |
| 1.2.6 其它功效 |
| 1.3 谷氨酸的神經(jīng)毒性研究 |
| 1.3.1 谷氨酸受體 |
| 1.3.2 谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)體 |
| 1.3.3 谷氨酸誘導(dǎo)神經(jīng)毒性的機(jī)制研究 |
| 1.4 研究的目的、意義及主要內(nèi)容 |
| 第二章 苦茶堿的提取與分離研究 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 實(shí)驗(yàn)材料和儀器設(shè)備 |
| 2.2.1 實(shí)驗(yàn)材料和試劑 |
| 2.2.2 主要儀器設(shè)備 |
| 2.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
| 2.3.1 苦茶總生物堿的分離純化 |
| 2.3.2 制備色譜條件優(yōu)化 |
| 2.3.3 HPLC分析 |
| 2.4 結(jié)果與分析 |
| 2.4.1 苦茶總生物堿的分離純化 |
| 2.4.2 制備色譜分離條件的篩選 |
| 2.5 討論 |
| 第三章 苦茶堿和A_(2A)受體拮抗劑SCH58261 對(duì)谷氨酸損傷HT22 細(xì)胞活性的影響 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 實(shí)驗(yàn)材料與設(shè)備 |
| 3.2.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞系 |
| 3.2.2 主要試劑及配制方法 |
| 3.2.3 相關(guān)儀器與設(shè)備 |
| 3.3 HT22細(xì)胞培養(yǎng)、傳代、凍存、復(fù)蘇及計(jì)數(shù) |
| 3.3.1 HT22細(xì)胞培養(yǎng)和傳代 |
| 3.3.2 HT22細(xì)胞凍存 |
| 3.3.3 HT22細(xì)胞復(fù)蘇 |
| 3.3.4 HT22細(xì)胞計(jì)數(shù) |
| 3.4 實(shí)驗(yàn)方法 |
| 3.4.1 不同濃度谷氨酸、苦茶堿、SCH58261分別處理HT22細(xì)胞 |
| 3.4.2 不同濃度苦茶堿和SCH58261對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷的影響 |
| 3.4.3 MTT實(shí)驗(yàn)方法 |
| 3.5 結(jié)果與分析 |
| 3.5.1 不同濃度谷氨酸對(duì)HT22細(xì)胞形態(tài)和存活率的影響 |
| 3.5.2 不同濃度苦茶堿對(duì)HT22細(xì)胞形態(tài)和存活率的影響 |
| 3.5.3 不同濃度SCH58261對(duì)HT22細(xì)胞形態(tài)和存活率的影響 |
| 3.5.4 不同濃度苦茶堿對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷作用的影響 |
| 3.5.5 不同濃度SCH58261對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷作用的影響 |
| 3.6 討論 |
| 第四章 苦茶堿對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞氧化應(yīng)激的影響 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 實(shí)驗(yàn)材料與設(shè)備 |
| 4.2.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞系 |
| 4.2.2 主要試劑及配制方法 |
| 4.2.3 相關(guān)儀器與設(shè)備 |
| 4.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
| 4.3.1 樣品前處理 |
| 4.3.2 SOD活力的測(cè)定 |
| 4.3.3 MDA含量的測(cè)定 |
| 4.3.4 考馬斯亮藍(lán)試劑盒測(cè)定蛋白濃度 |
| 4.4 結(jié)果與分析 |
| 4.4.1 苦茶堿對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)HT22細(xì)胞損傷SOD活力的影響 |
| 4.4.2 苦茶堿對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)HT22細(xì)胞損傷MDA含量的影響 |
| 4.5 討論 |
| 第五章 苦茶堿對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞凋亡的影響 |
| 5.1 前言 |
| 5.2 實(shí)驗(yàn)材料與設(shè)備 |
| 5.2.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞系 |
| 5.2.2 主要試劑及配制方法 |
| 5.2.3 相關(guān)儀器與設(shè)備 |
| 5.3 實(shí)驗(yàn)方法 |
| 5.3.1 Hoechst33342染色 |
| 5.3.2 流式Annexin V-FITC/PI雙染法檢測(cè)細(xì)胞凋亡率 |
| 5.4 結(jié)果與分析 |
| 5.4.1 Hoechst33342染色后HT22 細(xì)胞的形態(tài)學(xué)變化 |
| 5.4.2 流式Annexin V-FITC/PI雙染法檢測(cè)細(xì)胞凋亡率 |
| 5.5 討論 |
| 第六章 結(jié)論和展望 |
| 6.1 結(jié)論 |
| 6.2 創(chuàng)新 |
| 6.3 展望 |
| 參考文獻(xiàn) |
（8）磁性固相萃取—色譜法在食品和環(huán)境檢測(cè)中的應(yīng)用研究（論文提綱范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 緒論 |
| 1.1 磁性固相萃取法 |
| 1.2 磁性固相萃取劑 |
| 1.3 磁性固相萃取法在樣品前處理中的應(yīng)用 |
| 1.4 本文立題的意義及主要內(nèi)容 |
| 2 磁性固相萃取結(jié)合高效液相色譜-熒光檢測(cè)咖啡和茶葉中的多環(huán)芳烴 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 實(shí)驗(yàn) |
| 2.3 結(jié)果與討論 |
| 2.4 本章小結(jié) |
| 3 磁性萃取劑對(duì)環(huán)境水樣中磺胺類(lèi)和喹諾酮類(lèi)藥物的測(cè)定和去除研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 實(shí)驗(yàn) |
| 3.3 結(jié)果和討論 |
| 3.4 本章小結(jié) |
| 4 分子印跡-磁性固相萃取-氣相色譜法測(cè)定飲料中的咖啡因含量 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 實(shí)驗(yàn) |
| 4.3 結(jié)果與討論 |
| 4.4 本章小結(jié) |
| 5 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 在學(xué)期間的研究成果 |
| 致謝 |
（9）氣相色譜法測(cè)定茶鮮葉中有機(jī)氯和擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥殘留（論文提綱范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 茶文化 |
| 1.2 茶產(chǎn)業(yè) |
| 1.2.1 茶葉 |
| 1.2.2 茶葉的功效 |
| 1.2.3 茶葉種植業(yè) |
| 1.2.4 日照綠茶 |
| 1.3 茶葉農(nóng)藥殘留研究概述 |
| 1.3.1 農(nóng)藥基本情況概述 |
| 1.3.2 農(nóng)藥殘留 |
| 1.3.3 我國(guó)茶葉中農(nóng)藥殘留的歷史 |
| 1.3.4 樣品前處理技術(shù) |
| 1.3.5 農(nóng)藥殘留的檢測(cè)方法 |
| 1.4 本課題的研究意義及研究?jī)?nèi)容 |
| 1.4.1 本課題的研究意義 |
| 1.4.2 本課題的研究?jī)?nèi)容 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實(shí)驗(yàn)材料 |
| 2.1.1 實(shí)驗(yàn)原料 |
| 2.1.2 農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品 |
| 2.1.3 化學(xué)試劑 |
| 2.1.4 儀器及材料 |
| 2.1.5 SPE固相萃取柱 |
| 2.2 實(shí)驗(yàn)方法 |
| 2.2.1 所需樣品和藥品以及玻璃儀器的準(zhǔn)備 |
| 2.2.2. 農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 |
| 2.2.3 氣相色譜法分析條件 |
| 2.2.4 樣品前處理方法 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 儀器條件的優(yōu)化 |
| 3.1.1 色譜柱的選擇 |
| 3.1.2 色譜條件的選擇 |
| 3.1.3 色譜圖及20種農(nóng)藥的出峰順序 |
| 3.2 提取溶劑的優(yōu)化 |
| 3.2.1 提取溶劑的選擇 |
| 3.2.2 提取溶劑用量的選擇 |
| 3.2.3 提取方法的選擇 |
| 3.3 樣品凈化條件的優(yōu)化 |
| 3.3.1 固相萃取柱的選擇 |
| 3.3.2 洗脫液種類(lèi)的選擇 |
| 3.3.3 洗脫液用量的選擇 |
| 3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線、方法的回收率和精密度 |
| 3.4.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.4.2 方法的回收率、精密度 |
| 4 討論 |
| 4.1 固相萃取柱中Carbon/NH2柱與TPT柱的比較 |
| 4.2 固相萃取柱脫色效果的比較 |
| 5 結(jié)論 |
| 6 創(chuàng)新點(diǎn)和進(jìn)一步研究方向 |
| 6.1 創(chuàng)新點(diǎn) |
| 6.2 進(jìn)一步研究方向 |
| 6.2.1 茶鮮葉前處理的進(jìn)一步優(yōu)化 |
| 6.2.2 茶鮮葉農(nóng)殘檢測(cè)在實(shí)際工作中的應(yīng)用 |
| 6.2.3 擴(kuò)大方法的適用范圍 |
| 6.2.4 研究其他分析儀器 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
（10）食品中常用添加劑的高效毛細(xì)管電泳分析方法研究及應(yīng)用（論文提綱范文）
| 中英文縮寫(xiě)對(duì)照表 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 前言 |
| 1.1 課題研究背景 |
| 1.2 研究目的和意義 |
| 1.3 研究?jī)?nèi)容與方法 |
| 1.3.1 研究?jī)?nèi)容 |
| 1.4 課題中關(guān)鍵問(wèn)題及解決措施 |
| 第二章 毛細(xì)管電泳同時(shí)測(cè)定飲料、蜜餞及酸奶中11種食品添加劑 |
| 2.1 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 2.1.1 儀器和試劑 |
| 2.1.2 分離緩沖溶液、樣品提取或稀釋溶液配制 |
| 2.1.3 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的制備 |
| 2.1.4 標(biāo)準(zhǔn)工作液的制備 |
| 2.1.5 電泳條件 |
| 2.1.6 樣品處理 |
| 2.2 結(jié)果與討論 |
| 2.2.1 分離緩沖溶液的選擇 |
| 2.2.2 分離緩沖溶液濃度的選擇 |
| 2.2.3 分離緩沖溶液pH的選擇 |
| 2.2.4 分離緩沖溶液中SD濃度的選擇 |
| 2.2.5 樣品提取或稀釋溶液的選擇 |
| 2.2.6 分離電壓的選擇 |
| 2.2.7 進(jìn)樣時(shí)間的選擇 |
| 2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍、精密度及加標(biāo)回收率 |
| 2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍及檢出限、定量限 |
| 2.3.2 儀器精密度 |
| 2.3.3 方法精密度 |
| 2.3.3.2 可口可樂(lè) |
| 2.3.3.3 果凍 |
| 2.3.3.4 菠蘿干 |
| 2.3.4 加標(biāo)回收率 |
| 2.3.5 樣品分析 |
| 2.4 結(jié)論 |
| 第三章 毛細(xì)管電泳測(cè)定糖果、果凍、調(diào)制酒中的九種人工合成色素 |
| 3.1 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 3.1.1 儀器與試劑 |
| 3.1.2 分離緩沖溶液及樣品緩沖溶液配制 |
| 3.1.3 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的制備 |
| 3.1.4 電泳條件 |
| 3.1.5 樣品處理 |
| 3.2 結(jié)果與討論 |
| 3.2.1 分離緩沖溶液類(lèi)型的選擇 |
| 3.2.2 分離緩沖溶液鹽濃度的優(yōu)化 |
| 3.2.3 分離緩沖溶液pH的優(yōu)化 |
| 3.2.4 分離緩沖溶液中 β-CD濃度的優(yōu)化 |
| 3.2.5 分離緩沖溶液中EtOH濃度的優(yōu)化 |
| 3.2.6 分離電壓的選擇 |
| 3.2.7 進(jìn)樣時(shí)間的選擇 |
| 3.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍、精密度及加標(biāo)回收率 |
| 3.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍及檢出限、定量限 |
| 3.3.2 儀器精密度 |
| 3.3.3 方法精密度 |
| 3.3.4 加標(biāo)回收率 |
| 3.3.5 樣品分析 |
| 3.4 結(jié)論 |
| 第四章 毛細(xì)管電泳測(cè)定茶葉中的咖啡因、可可堿、茶堿 |
| 4.1 實(shí)驗(yàn)部分 |
| 4.1.1 儀器和試劑 |
| 4.1.2 分離緩沖溶液及樣品緩沖溶液配制 |
| 4.1.3 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的制備 |
| 4.1.4 電泳條件 |
| 4.1.5 樣品處理 |
| 4.2 結(jié)果與討論 |
| 4.2.1 分離緩沖體系的選擇 |
| 4.2.2 分離緩沖溶液濃度的選擇 |
| 4.2.3 分離緩沖溶液pH的優(yōu)化 |
| 4.2.4 分離緩沖溶液PEG20000濃度的優(yōu)化 |
| 4.2.5 分離緩沖溶液中甲醇濃度的優(yōu)化 |
| 4.2.6 分離緩沖溶液中SDS濃度的優(yōu)化 |
| 4.2.7 樣品緩沖溶液中甲醇含量對(duì)分離的影響 |
| 4.2.8 其他電泳條件的優(yōu)化 |
| 4.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍、精密度及加標(biāo)回收率 |
| 4.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍及檢出限、定量限 |
| 4.3.2 儀器精密度 |
| 4.3.3 方法精密度 |
| 4.3.4 加標(biāo)回收率 |
| 4.3.5 樣品分析 |
| 4.4 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 文獻(xiàn)綜述 |
| 5.1 防腐劑簡(jiǎn)介及分析方法現(xiàn)狀 |
| 5.2 甜味劑簡(jiǎn)介及分析方法現(xiàn)狀 |
| 5.3 人工合成色素簡(jiǎn)介及分析方法現(xiàn)狀 |
| 5.4 咖啡因等生物堿的簡(jiǎn)介及分析方法現(xiàn)狀 |
| 5.5 小結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 攻讀學(xué)位期間發(fā)表論文情況 |
| 致謝 |
| 個(gè)人簡(jiǎn)歷 |
四、氣相色譜法直接測(cè)定茶葉中的咖啡因和茶堿（論文參考文獻(xiàn)）
- [1]藥學(xué)專(zhuān)業(yè)實(shí)踐教學(xué)“茶葉中咖啡因的提取與含量測(cè)定”的設(shè)計(jì)[J]. 袁治倩,傅春燕,曾偉,龍一鳴,王婷. 廣州化工, 2021(13)
- [2]液質(zhì)聯(lián)用法測(cè)定馬尿液和血液中茶堿殘留[D]. 宋小霞. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2020(06)
- [3]高效毛細(xì)管電泳與前沿核酸檢測(cè)技術(shù)在衛(wèi)生分析中的應(yīng)用[D]. 韓燕禎. 河北醫(yī)科大學(xué), 2020(02)
- [4]碳納米管在茶葉品質(zhì)與安全檢測(cè)中的應(yīng)用進(jìn)展[J]. 劉騰飛,楊代鳳,董明輝,徐琪,趙佳昕. 食品科學(xué), 2020(05)
- [5]磁性表面分子印跡微球的制備、表征及對(duì)咖啡因的分離分析研究[D]. 鄧慧蕓. 中南林業(yè)科技大學(xué), 2019(01)
- [6]咖啡因檢測(cè)方法研究進(jìn)展[J]. 王樂(lè),賈宗平,趙文成,楊亞飛. 云南警官學(xué)院學(xué)報(bào), 2019(01)
- [7]苦茶堿的分離制備以及對(duì)谷氨酸誘導(dǎo)的HT22細(xì)胞損傷的保護(hù)作用[D]. 陳書(shū)清. 浙江大學(xué), 2018(05)
- [8]磁性固相萃取—色譜法在食品和環(huán)境檢測(cè)中的應(yīng)用研究[D]. 石亞亭. 山西師范大學(xué), 2017(03)
- [9]氣相色譜法測(cè)定茶鮮葉中有機(jī)氯和擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥殘留[D]. 石巖. 山東農(nóng)業(yè)大學(xué), 2016(03)
- [10]食品中常用添加劑的高效毛細(xì)管電泳分析方法研究及應(yīng)用[D]. 武宇晨. 首都醫(yī)科大學(xué), 2016(11)
標(biāo)簽：咖啡因論文; 分子印跡技術(shù)論文; 儀器分析論文; 咖啡論文; 茶堿論文;