一、白參菌多糖的提取及含量測定（論文文獻(xiàn)綜述）
秦忠雪,唐嘉陽,阮佳[1]（2021）在《食用菌粗多糖測定中粗多糖提取方法的優(yōu)化研究》文中研究指明目的食用菌中的多糖成分具有較高的藥用保健價值,為了提高食用菌中多糖的提取效率,本研究對經(jīng)典的食用菌多糖提取方法—熱水浸提-醇沉淀法進(jìn)行了優(yōu)化。方法選取影響熱水浸提-醇沉淀法提取效率的三個主要因素,即沸水浴加熱時長,超聲波提取時長和醇沉濃度分別進(jìn)行優(yōu)化。采用SPSS 21.0軟件進(jìn)行Wilcoxon符號秩和檢驗,檢驗水準(zhǔn)α=0.05。結(jié)果通過條件優(yōu)化實驗可知,當(dāng)沸水浴加熱時長為1.5 h,超聲波提取時長為15 min,醇沉濃度為70%時,食用菌中多糖提取效率最佳。優(yōu)化后提取技術(shù)的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差范圍是1.15%～1.24%,加標(biāo)回收率范圍是89.5%～95.9%。將優(yōu)化后的提取技術(shù)用于各種類食用菌樣品中,兩者檢測結(jié)果經(jīng)統(tǒng)計學(xué)檢驗得P<0.01,可認(rèn)為優(yōu)化后的方法比原方法具有更高的提取效率。結(jié)論本研究提高了食用菌粗多糖的提取效率,研究結(jié)果為進(jìn)一步地開發(fā)和利用食用菌多糖提供了一定的參考依據(jù)。
周艷[2]（2020）在《猴頭菌多糖的硫酸化修飾及生物活性研究》文中研究說明本課題以猴頭菌為材料,通過水提醇沉法提取猴頭菌多糖（Hericium esrinaceus mixture polysaccharide,HEPM）,氯磺酸-吡啶法進(jìn)行硫酸化修飾,得到猴頭菌硫酸化多糖（Hericium esrinaceus sulfate polysaccharide mixture,S-HEPM）。對其進(jìn)行分離及純化,確定硫酸基團(tuán)的取代度,分析猴頭菌硫酸化多糖的糖苷鍵、成分及單糖組成。研究猴頭菌多糖修飾前后對生物活性的變化。試驗結(jié)果如下:通過響應(yīng)面法優(yōu)化猴頭菌多糖的最佳硫酸化修飾的條件是氯磺酸-吡啶的摩爾比1:4,反應(yīng)的溫度為59℃,反應(yīng)的時間為2.6 h,取代度為0.457。將S-HEPM通過離子交換層析柱和凝膠過濾層析柱進(jìn)一步純化,得到組分均一的猴頭菌硫酸化多糖（sulfated polysaccharides of Hericium esrinaceus,S-HEP）。苯酚-濃硫酸法測定總糖含量為89.98%±0.23%;Bradford法在S-HEP中未檢測出蛋白質(zhì);硫酸-咔唑法測定糖醛酸含量為0.53%±0.12%。紅外光譜顯示,在1270 cm-1、834 cm-1處分別增加了S=O、C-O-S鍵的伸縮振動,說明了猴頭菌多糖鏈上的羥基中的氫鍵被替換成了硫酸基團(tuán),硫酸基團(tuán)與猴頭菌多糖結(jié)合成了酯。通過毛細(xì)管電泳測定了S-HEP的單糖組成為Glc、Man、Gal,單糖組成比例為1.47:0.21:1.00。抗腫瘤試驗結(jié)果表明,在相同的條件下相比,S-HEP對人胃癌細(xì)胞SGC-7901的生長抑制效果更佳;濃度為100μg/m L時,S-HEP呈極顯著性差異;在48 h時,HEP和S-HEP的IC50分別為425.09±2.49μg/m L和308.36±8.74μg/m L;相同濃度下,在S-HEP作用下的細(xì)胞數(shù)量減少,呈現(xiàn)出空泡化,漂浮細(xì)胞增加;S-HEP可以更好地促進(jìn)Caspase-3,8,9的酶活性,導(dǎo)致SGC-7901細(xì)胞快速凋亡;相同濃度下,S-HEP比HEP可以更有效的抑制SGC-7901細(xì)胞的遷移。免疫調(diào)節(jié)試驗結(jié)果表明,相同條件下,S-HEP對RAW264.7細(xì)胞的生長能力更強(qiáng);濃度為100μg/m L時,呈現(xiàn)出顯著性差異;濃度為200μg/m L時,呈現(xiàn)出極顯著性差異。相同濃度下,S-HEP表現(xiàn)出更強(qiáng)的吞噬能力,增強(qiáng)一氧化氮（NO）及細(xì)胞因子（IL-6、IL-1β）的水平,從而促進(jìn)S-HEP的免疫調(diào)節(jié)作用?？寡趸囼灲Y(jié)果表明,S-HEP對DPPH、ABTS、·OH和·O2-自由基的清除能力的EC50分別為125.41±1.87μg/m L、146.73±2.05μg/m L、127.42±1.97μg/m L和114.39±1.89μg/m L;HEP的EC50分別為222.76±2.11μg/m L、312.85±2.40μg/m L、383.78±2.45μg/m L和399.24±2.45μg/m L。S-HEP和HEP總抗氧化能力分別為169.91±2.04μg/m L和243.15±2.25μg/m L,說明S-HEP具有良好的抗氧化能力。猴頭菌中的硫酸化多糖在抗腫瘤、免疫調(diào)節(jié)、抗氧化等諸多方面都可以具有較好的活性,可以廣泛作為藥物和臨床應(yīng)用癌癥預(yù)防治療的一種先導(dǎo)性活性化合物,可以為對猴頭菌多糖的研究提供科學(xué)依據(jù)。
梁琴[3]（2018）在《油茶桑寄生多糖提取工藝優(yōu)化及體外抗凝抗氧化活性研究》文中認(rèn)為植物多糖因其廣泛的藥理活性和低毒性而成為當(dāng)前醫(yī)藥領(lǐng)域的研究熱點。桑寄生作為一種臨床常見中藥,被《神農(nóng)本草經(jīng)》列為上品,目前對于桑寄生多糖的研究多集中于紅花桑寄生多糖,而對于寄生于油茶上的桑寄生科離瓣寄生屬植物油茶桑寄生的多糖研究尚未見報道。本研究目的在于探索油茶桑寄生多糖的最佳提取工藝,并分析提取得到的油茶桑寄生多糖的結(jié)構(gòu)特征及生物活性,希望為油茶桑寄生多糖的開發(fā)及利用提供依據(jù)。通過單因素和響應(yīng)面法來確定以水為溶劑提取油茶桑寄生枝多糖的最佳提取工藝,用醇沉法對油茶桑寄生的根、枝和葉三個部位分別以水、酸和堿為溶劑,運(yùn)用所得最佳提取工藝,提取得到九種粗多糖,運(yùn)用苯酚-硫酸法、BCA法以及間羥基聯(lián)苯法分別對提取得到的九種油茶桑寄生多糖的總糖、蛋白質(zhì)以及糖醛酸含量進(jìn)行測定,運(yùn)用IR、GC以及GPC對九種油茶桑寄生多糖的結(jié)構(gòu)特征進(jìn)行分析,運(yùn)用ABTS、DPPH以及CAA實驗,測定九種油茶桑寄生多糖的體外抗氧化活性,運(yùn)用APTT、PT以及TT實驗,測定九種油茶桑寄生多糖的體外抗凝血活性,并探討其抗氧化及抗凝血活性與結(jié)構(gòu)、提取溶劑及提取部位的關(guān)系。結(jié)果表明:（1）通過單因素和響應(yīng)面法得到最佳提取工藝為:溫度95.55℃,提取次數(shù)2.59次,提取時間2.20h,液固比10.09mL/g,理論多糖得率2.67%。考慮到實際提取,對最佳值進(jìn)行調(diào)整,后續(xù)提取中按照如下條件:溫度95℃,提取次數(shù)2次,提取時間2h,液固比10mL/g,理論多糖得率2.49%,實際多糖得率2.49±0.2%。（2）提取得到的九種油茶桑寄生多糖的總糖含量、糖醛酸含量、蛋白質(zhì)含量、平均分子量以及單糖組成與油茶桑寄生多糖的提取部位、提取溶劑有關(guān)。（3）在同一提取部位中,以堿為溶劑提取的油茶桑寄生多糖的平均分子量最小。（4）提取得到的九種油茶桑寄生多糖均由鼠李糖（Rha）、阿拉伯糖（Ara）、木糖（Xyl）、葡萄糖（Glc）、甘露糖（Man）、半乳糖（Gal）所構(gòu)成,但其摩爾比各不相同。（5）紅外光譜顯示提取得到的九種油茶桑寄生多糖為α構(gòu)型或β構(gòu)型的吡喃環(huán)多糖。（6）抗凝血實驗表明提取得到的九種油茶桑寄生多糖均具有體外抗凝血活性。其抗凝血活性與其糖醛酸含量、半乳糖含量以及提取部位有關(guān)。（7）提取得到的九種油茶桑寄生多糖的抗氧化活性與提取溶劑、提取部位以及平均分子量有關(guān),其抗氧化活性與平均分子量呈現(xiàn)出負(fù)相關(guān)的關(guān)系。本研究希望為后續(xù)油茶桑寄生多糖的開發(fā)及利用提供了理論基礎(chǔ)及實驗依據(jù)。
姚茜,侯娟,祝迪凡,袁紅,吳聽潮,楊宙[4]（2017）在《簡鞘蛇菰及其寄主植株多糖成分的提取與優(yōu)化》文中研究表明為了尋找適于測定簡鞘蛇菰多糖含量的穩(wěn)定方法。本文以簡鞘蛇菰、粉背南蛇藤、山桂花的塊根為材料,采用超聲波協(xié)同酶法提取多糖,再以改良苯酚-硫酸比色法測定,根據(jù)葡糖糖標(biāo)準(zhǔn)曲線計算得其多糖含量。其中多糖含量分別為:6.75%、9.50%、10.00%。超聲波協(xié)同酶法可作為簡鞘蛇菰及其寄主植株中多糖的提取方法,且為其多糖的應(yīng)用與替代奠定了基礎(chǔ)。
烏云塔娜,齊明玉,劉敏[5]（2013）在《蓽茇多糖提取與含量測定》文中研究指明目的:提取蓽茇多糖（簡稱PLPS）,測定蓽茇多糖含量。方法:采用水提醇沉法提取蓽茇多糖（PLPS）,苯酚—硫酸法測定蓽茇中多糖含量。結(jié)果:蓽茇多糖（PLPS）含量65.37%。
胡建[6]（2011）在《牛蒡多糖的提取純化及其抗氧化性研究》文中指出牛蒡別名惡實根、鼠粘根、牛菜等,屬于菊科牛蒡?qū)賰赡晟荼局参?以肉質(zhì)根為產(chǎn)品。牛蒡多糖具有促進(jìn)生長、抑制腫瘤生長和抗菌,抗真菌作用。目前在我國做藥食兩用,近年來才開始對牛蒡的營養(yǎng)價值和藥理進(jìn)行研究。本文研究通過不同的提取方式提取牛蒡多糖,并優(yōu)化了提取工藝；研究優(yōu)化多糖的純化工藝；研究牛蒡多糖結(jié)構(gòu)信息表征；最后研究了粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖的抗氧化作用。研究結(jié)果如下：1.探討了熱水,超聲波輔助以及微波輔助浸提牛蒡多糖的工藝。研究三種提取工藝的料水比,提取時間,提取溫度,乙醇濃度等因素對牛蒡多糖提取的影響。在單因素的基礎(chǔ)上,對熱水,超聲波輔助以及微波輔助浸提法進(jìn)行正交實驗優(yōu)化。結(jié)果顯示熱水浸提最佳條件為：料水比1：10,提取溫度80℃,浸提2h,提取率為3.94%。超聲輔助浸提最佳條件為料水比1：15,超聲輔助浸提25min,乙醇濃度80%,提取率為5.09%。微波輔助浸提最佳條件為料水比1：15,微波浸提25min,乙醇濃度為70%,提取率為4.09%。對比三種提取工藝可以看出采用超聲輔助浸提牛蒡多糖的提取率最高。2.牛蒡多糖分離純化的研究中發(fā)現(xiàn)Sevag法+酶法去除蛋白質(zhì)的方法比單純使用Sevag法或酶法更有優(yōu)勢,即采用酶法去除大部分蛋白質(zhì)后再采用Sevag法去除少部分的游離蛋白質(zhì),其最主要優(yōu)勢在于多糖的損失小。水解使用中性蛋白酶,條件為45℃,0.5%酶量,1h,pH為7。小分子物質(zhì)的去除采用截留量為3000的透析袋流水透析36h。牛蒡多糖經(jīng)過SephadexG-75柱層析后分離出兩種多糖,本文收集大峰值部分。經(jīng)過紫外光譜分析表明此多糖是不含有蛋白質(zhì),核酸的多糖,瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果表明純化后多糖純度較高。經(jīng)檢測旋光度為：-30.80。3.對多糖的研究顯示,多糖的各種生物活性與其結(jié)構(gòu),構(gòu)像等有著密切的關(guān)系在對牛蒡多糖的單糖組成的研究中發(fā)現(xiàn)：牛蒡多糖的薄層層析分析出其可能由葡萄糖,果糖,半乳糖組成。對牛蒡多糖的1HNMR譜分析表明多糖具有α和β兩種構(gòu)型的糖苷鍵,多糖由三種單糖組成。也從側(cè)面表明了牛蒡多糖由葡萄糖,果糖,半乳糖三種單糖組成。通過高碘酸氧化反應(yīng),說明牛蒡純多糖存在1→6鍵型,還存在大量的1→2或1→4鍵。1→6與1→2或1→4鍵型的數(shù)量比約為1：1.1。4.分別對牛蒡多糖粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖進(jìn)行體外抗氧化性試驗,研究多糖在DPPH體系中的抗氧化性,對豬油,芝麻油的抗氧化性,清除超氧陰離子羥基自由基能力和還原力。結(jié)果表明：（1）DPPH清除率：粗多糖、脫蛋白多糖、純化多糖與DPPH·質(zhì)量比分別為3.84,4.00,4.74時,可以清除50%的DPPH·自由基,由此可得三種多糖的抗氧化性依次減弱；（2）過氧化值：粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖對豬油,芝麻油均有氧化抑制作用。三種多糖的氧化抑制效果依次減弱?？寡趸Ч请S著添加量的增加而增強(qiáng),豬油建議添加量在0.05%-0.1%；（3）羥基自由基：粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖濃度分別為0.28mg/mL,0.37mg/mL,0.44mg/mL時可清除50%羥基自由基,由此可得三種多糖對羥基自由基的清除能力依次減弱；（4）超氧陰離子自由基：粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖濃度分別為0.34mg/mL,0.51mg/mL0.55mg/mL時可清除50%超氧陰離子,由此可得三種多糖對超氧陰離子的清除能力依次減弱；（5）還原力：粗多糖,脫蛋白多糖,純化多糖濃度分別為0.52mg/mL,0.57mg/mL,0.59mg/mL時吸光度為0.5,由此可得三種多糖的還原力依次減弱。
楊黎江,路金榮,王曉娟,沈放[7]（2010）在《蛇菰多糖的提取及測定》文中指出以蛇菰為材料,采用水提醇沉法提取濃縮后獲得蛇菰多糖,以改良苯酚—硫酸比色法測定其多糖量.研究表明,蛇菰中多糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.38%;加樣回收率為100.73%,RSD為1.61%.因此,水提醇沉法可作為蛇菰中多糖的提取方法,改良苯酚—硫酸比色法可以作為蛇菰中多糖的定量測定方法.
李雯[8]（2010）在《密花石斛多糖的提取分離及其初步生物活性研究》文中研究指明密花石斛為蘭科石斛屬植物,該屬植物所含化學(xué)成分類型多樣,除生物堿外,還有菲類、聯(lián)芐類、多糖、香豆素類、倍半萜類、甾體以及揮發(fā)油等,其中石斛多糖類成分具有抗腫瘤、增強(qiáng)免疫力、降低血糖等藥理作用。深入研究表明：石斛屬植物活性作用的強(qiáng)弱與其水溶性多糖含量之間存在正相關(guān)性,且植物中的酸性多糖往往具有較大的生物活性；但是有關(guān)密花石斛水溶酸性多糖類化學(xué)成分及其生物活性作用的研究迄今鮮見報道。本研究通過正交設(shè)計試驗優(yōu)選出密花石斛粗多糖提取工藝；采用DEAE-52纖維素柱分離純化密花石斛粗多糖,分別獲得4種酸性多糖成分（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）;利用凝膠過濾法通過Sephadex G-100層析柱分別測出4種酸性多糖的相對分子質(zhì)量,并對酸性多糖相對分子質(zhì)量與酸性多糖的酸性強(qiáng)弱之關(guān)聯(lián)性進(jìn)行了探討。在生物學(xué)初步研究中,通過體外脾細(xì)胞增殖試驗和抗腫瘤生長抑制試驗結(jié)果綜合比較四種酸性多糖之間藥效學(xué)活性大小,得出密花石斛水溶酸性多糖酸性大小與其藥效學(xué)作用之間的關(guān)系,初步認(rèn)為藥效學(xué)作用較好的一段密花石斛水溶酸性多糖相對分子質(zhì)量之區(qū)間。目的：1.篩選和優(yōu)化密花石斛多糖提取工藝,采用正交設(shè)計法,以提取率為考察指標(biāo),以加熱溫度（50℃、70℃、90℃）、料液比（10倍、20倍、30倍）、提取時間（1小時、2小時、3小時）、提取次數(shù)（1次、2次、3次）為考察因素,優(yōu)選藥材的最佳提取條件。2.分離純化密花石斛粗多糖。采用DEAE-52纖維素柱,根據(jù)酸性基團(tuán)增加則多糖成分在DEAE-52纖維素柱上吸附力隨之增加的原理,以不同濃度的NaCl溶液分段梯度洗脫DEAE-52纖維素柱,分別得到4種酸性程度不同的的密花石斛多糖成分（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）。3.采用凝膠過濾法,通過Sephadex G-100柱分別測出4種密花石斛酸性多糖的相對分子質(zhì)量,探討密花石斛酸性多糖之間的酸性強(qiáng)弱與其相對分子質(zhì)量的關(guān)聯(lián)性。4.研究4種密花石斛酸性多糖（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）對正常小鼠脾細(xì)胞增殖的影響,并比較其作用強(qiáng)弱。5.研究4種密花石斛酸性多糖（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）對人肺瘤細(xì)胞A549和人肝瘤細(xì)胞G2生長抑制的影響,比較其作用強(qiáng)弱。6.根據(jù)脾細(xì)胞增殖試驗和抗腫瘤生長抑制試驗,綜合比較四種密花石斛酸性多糖藥效學(xué)活性作用之強(qiáng)弱。結(jié)合各酸性多糖的酸性強(qiáng)弱,得出藥效學(xué)作用與酸性多糖酸性強(qiáng)弱的關(guān)系。方法：1.分別取10g密花石斛粉末,按L9（34）正交設(shè)計實驗方案,各自加入不同倍數(shù)的去離子水,分別在特定溫度下提取一定時間和次數(shù),提取液過濾,合并之,濃縮至15ml。加45ml（3倍體積量）95%乙醇過夜,離心,沉淀物加去離子水溶解,sevage法去除蛋白后得密花石斛粗多糖。準(zhǔn)確稱取一定量密花石斛粗多糖,去離子水溶解、稀釋后定容。采用硫酸-苯酚法測定其多糖含量,每一試驗平行2次,取平均值進(jìn)行正交試驗結(jié)果分析,找出最佳提取工藝。2. DEAE-52纖維素柱層析分離密花石斛粗多糖之中性糖和酸性多糖。取密花石斛粗多糖1.0g,溶于30ml去離子水中上樣,分別用去離子水、0.05mol·L-1、0.1mol·L-1、0.2mol·L-1、0.3 mol·L-1、0.4mol·L-1、0.5mol·L-1 NaCl分段梯度洗脫,按5ml／管收集洗脫液。苯酚-硫酸法顯色,測其吸光度,繪制洗脫曲線,合并各濃度洗脫液主峰段的溶液,透析24h（透析袋截留相對分子質(zhì)量為3500D）,留存透析袋內(nèi)母液,合并后減壓濃縮,加3倍體積量95%乙醇,離心后烘干沉淀物,得各濃度NaCl洗脫的酸性多糖干燥品。3.凝膠過濾法求相對分子質(zhì)量（1）繪制相對分子質(zhì)量的標(biāo)準(zhǔn)曲線使用Sephadex G-100柱層析,將已知相對分子質(zhì)量的Dextran T-5、T-40、T-70（重均相對分子質(zhì)量分別為5000、40000、70000D）相繼上柱,上樣量為2.5mg,用去離子水進(jìn)行洗脫,苯酚-硫酸法顯色,測吸光度,已洗脫體積為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制洗脫曲線,分別得出洗脫體積Ve。用Dextran T-2000同法測得柱床體積Vo。以Ve/Vo為橫坐標(biāo),相對分子質(zhì)量對數(shù)（logM）為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出回歸方程。（2）密花石斛酸性多糖相對分子質(zhì)量的測定將PGM1、PGM2、PGM3、PGM4同法相繼上柱,測得Ve,將Ve/Vo帶入回歸方程算出各樣品的相對分子質(zhì)量。4.脾細(xì)胞增殖試驗：取正常小鼠脾臟,常規(guī)制備脾細(xì)胞懸液,加入密花石斛酸性多糖（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）,終濃度為100、50、25μg/ml。在37℃下培養(yǎng)44h,加入5mg/ml MTT溶液20μl,繼續(xù)培養(yǎng)4h,棄上清,加DMSO振搖,于λ=570nm處測吸光度。5.抗腫瘤生長抑制試驗：將處于對數(shù)生長期的人肺癌A549細(xì)胞用胰酶消化,制成細(xì)胞懸液,培養(yǎng)24h,加入密花石斛酸性多糖（PGM1、PGM2、PGM3、PGM4）,終濃度為200、100、50μg/ml。在37℃下培養(yǎng)44h,加入5mg/ml MTT溶液20μl繼續(xù)培養(yǎng)4h,棄上清,加DMSO振搖,于λ=570nm處測吸光度。計算抑制率（抑制率%=（1-加藥組細(xì)胞平均吸光值／對照組平均吸光值）×100%）。人肝癌G2細(xì)胞生長抑制率試驗方法同人肺癌A549。結(jié)果：1.加熱溫度、料液比、提取時間與提取次數(shù)對提取工藝中多糖含量均有顯著性影響,其影響程度依次為A>D>C>B,即加熱溫度>回流次數(shù)>回流時間>料液比。最佳提取工藝為A3B2C2D3,即：90℃、20倍去離子水、回流2次、每次3h。本試驗優(yōu)選出的提取工藝為密花石斛多糖提取工業(yè)化生產(chǎn)有一定參考價值。采用本提取工藝條件,對密花石斛進(jìn)行兩次平行試驗,提取結(jié)果取平均值,得出密花石斛粗多糖提取率為3.15%。2.經(jīng)DEAE-52纖維素柱層析分離后,所得密花石斛中性多糖成分占密花石斛總多糖的大部分,密花石斛酸性多糖成分較少,且其量隨NaCl濃度的增大而逐漸減少。為保障有足夠量密花石斛酸性多糖成分開展后續(xù)藥理實驗,本課題研究中選定前四個濃度NaCl洗脫的酸性多糖作為實驗樣品,即洗脫液分別為0.05mol·L-1、0.1mol·L-1、0.2mol·L-1、0.3 mol·L-1 NaCl水溶液,對應(yīng)密花石斛酸性多糖干燥品依次命名為PGM1、PGM2、PGM3與PGM4,且其酸洗強(qiáng)度大小為PGM4>PGM3>PGM2>PGM1。3.以凝膠過濾法測試Dextran T-5、T-40、T-70和Dextran T-2000四個標(biāo)準(zhǔn)品,經(jīng)計算得出多糖相對分子質(zhì)量回歸方程為：y=-0.4141x+5.362, r=0.9984。多糖相對分子質(zhì)量對數(shù)在3.699～4.845范圍內(nèi)呈線性。本實驗研究中四種密花石斛酸性多糖的相對分子質(zhì)量均不相同,且每種密花石斛酸性多糖的相對分子質(zhì)量也不單一,都有2～3個主要相對分子質(zhì)量分布區(qū)域,分布在5000-70000之間。為方便比較起見,本文將5000-70000劃分成三個區(qū)域,即Ⅰ區(qū)（70000-50000）D、Ⅱ區(qū)（50000-28000）D、Ⅲ區(qū)（10000-5000）D,并計算了每種密花石斛酸性多糖相對分子質(zhì)量在各個區(qū)域所占的百分比重。4.脾細(xì)胞增殖試驗表明：除PGM1 （25μg/ml）外,PGM1 （100、50μg/ml）、PGM2、PGM3、PGM4 （100、50、25μg/ml）均可明顯促進(jìn)正常脾細(xì)胞增殖（P<0.05）,且在一定范圍內(nèi)有濃度依賴趨勢。4種密花石斛酸性多糖對脾細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用強(qiáng)度,整體比較為PGM4> PGM2> PGM3> PGM 1。5.體外抗人肺癌A549細(xì)胞增殖實驗證實：PGM4、PGM3和PGM2（50、100、200μg/ml）. PGM1（100μg/ml）均能顯著性抑制腫瘤細(xì)胞增殖（P<0.05）；在抗人肝癌A549細(xì)胞增殖實驗中：PGM4、PGM3 （50、100、200μg/ml）和PGM2（200μg/ml）對G2細(xì)胞的增殖表現(xiàn)出了明顯的抑制作用。整體比較,抗人肺癌A549和人肝癌A549兩個試驗中四種密花石斛酸性多糖表現(xiàn)為同一作用趨勢,即：PGM4> （PGM2、PGM3）> PGM1,其中PGM2和PGM3作用非常接近。6.綜合四種密花石斛酸性多糖脾細(xì)胞增殖試驗、抗腫瘤生長抑制試驗及其相對分子質(zhì)量測定數(shù)據(jù),生物學(xué)活性作用以密花石斛酸性多糖PGM4最強(qiáng),其相對分子質(zhì)量集中在Ⅱ區(qū)和Ⅲ區(qū),偏重于Ⅲ區(qū)（45.03%）,實際上另3種密花石斛酸性多糖PGM1、PGM2與PGM3的相對分子質(zhì)量也多處在Ⅲ區(qū),由此可初步認(rèn)為相對分子質(zhì)量集中在（10000-5000）D區(qū)間的密花石斛酸性多糖,其生物活性藥效相對較強(qiáng),而集中于Ⅱ區(qū)（50000-28000）D者則相對較弱。由于PGM2和PGM3在Ⅰ區(qū)（70000-50000）D均占20%以上,說明相對分子質(zhì)量處于Ⅰ區(qū)的密花石斛酸性多糖也存在部分生物活性作用?？紤]到生物活性作用最強(qiáng)的PGM4在Ⅰ區(qū)僅占6.5%,故較難比較Ⅰ區(qū)與Ⅲ區(qū)密花石斛酸性多糖生物學(xué)活性作用之強(qiáng)弱,留待后續(xù)研究。結(jié)論：1.篩選到的最佳提取工藝為：90℃、料液比為1：20、回流2次、每次3h,此工藝對密花石斛多糖提取工業(yè)化生產(chǎn)具有一定參考價值。2.密花石斛多糖混合物中以中性多糖成分為主,其酸性多糖成分較少,且酸性多糖的含量隨酸性基團(tuán)的增加而降低。4個密花石斛酸性多糖的酸性強(qiáng)度為：PGM4>PGM3>PGM2>PGM1。3.雖然PGM1、PGM2、PGM3、PGM4酸性逐漸增強(qiáng),但這4種密花石斛多糖的相對分子質(zhì)量分布均較寬,以本實驗研究結(jié)果暫不能對PGM1、PGM2、PGM3、PGM4之間的相對分子質(zhì)量大小進(jìn)行排序,故初步判斷密花石斛多糖的酸性強(qiáng)弱與其相對分子質(zhì)量之間沒有直接關(guān)聯(lián)性。4.結(jié)合酸性多糖的酸性強(qiáng)弱和藥效學(xué)試驗,初步得出生物學(xué)活性與密花石斛酸性多糖的酸性強(qiáng)度成正比。5.密花石斛酸性多糖相對分子質(zhì)量集中在Ⅰ區(qū)（70000-50000）D、Ⅱ區(qū)（50000-28000）D和Ⅲ區(qū)（10000-5000）D的物質(zhì)可能有生物學(xué)活性,以相對分子質(zhì)量集中在Ⅲ區(qū)的密花石斛酸性多糖藥效作用可能最強(qiáng)。
郝強(qiáng)[9]（2008）在《酸提香菇多糖的提取分離、結(jié)構(gòu)鑒定及抗氧化活性研究》文中指出香菇是一種集營養(yǎng)、保健和藥用功效于一體的可直接利用的藥食兩用菌類,廣泛的分布于我國各省。香菇中含多種有效藥用成分,尤其含有一種非特異免疫刺激劑（具有抗病毒、抗腫瘤、降血糖等生物活性的香菇多糖）。并且在臨床上得到廣泛應(yīng)用。本文以香菇柄為原料,首次采用酸為提取劑對香菇中水溶性多糖進(jìn)行提取、分離、純化、結(jié)構(gòu)的初步鑒定、生物活性的研究。實驗具體分為以下幾部分:1.采用酸浸提法提取香菇多糖,以酸濃度、料液比、浸提時間、浸提溫度和加醇比為影響因素,通過五元二次回歸通用旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計,確定出優(yōu)化的主要工藝條件是:酸濃度0.16-0.23 mol/L、料液比1:36-1:49、浸提時間2.7h-3.8h、浸提溫度50℃-67.8℃、加醇比1:2-1:3,4℃醇沉24h。浸提1次提取多糖得率為7.61%,浸提2次提取多糖得率可達(dá)13.56%。2.研究了香菇多糖的分離純化方法,并進(jìn)行純度鑒定。采用鞣酸法脫除游離蛋白,雙氧水脫色,得到初步純化的多糖。再經(jīng)過乙醇梯度分級,得到三種級分多糖SP1、SP2、SP3得率分別為25.58%、64.77%、9.64%。通過凍融離心,Sephadex G-100柱層析檢驗,香菇多糖SP2為相對均一多糖。且中性糖含量為56.79%,糖醛酸含量為28.11%,蛋白質(zhì)含量為1.20%。3.對香菇多糖SP2結(jié)構(gòu)進(jìn)行了初步研究,采用凝膠色譜法（GPC）測定香菇多糖SP2分子量,重均分子量為5.203×104Da;通過氣相色譜檢測香菇多糖SP2的單糖組成,其香菇多糖SP2的單糖組成為葡萄糖、甘露糖和半乳糖,并以葡萄糖為主;紅外掃描的結(jié)果表明香菇多糖SP2具有D-吡喃葡萄糖構(gòu)型;4.采用化學(xué)發(fā)光法考察香菇多糖SP和SP2的抗氧化活性,結(jié)果表明香菇多糖SP和SP2都具有清除超氧陰離子、羥基自由基、過氧化氫的能力。通過化學(xué)模擬體系體外和體內(nèi)抗氧化試驗表明,香菇多糖SP和SP2具有抑制小鼠紅細(xì)胞溶血,抑制小鼠肝組織勻漿MDA的生成和肝線粒體腫脹度的作用。
孫鳴燕[10]（2008）在《辣木黃酮和多糖提取方法及其含量影響因素的初步研究》文中研究表明為了穩(wěn)定和提高辣木產(chǎn)品的有效成分含量,本研究以廣東韶關(guān)學(xué)院英東生態(tài)園種植的二年生辣木為材料,比較了辣木有效成分黃酮和多糖的提取和測定方法,找到了辣木黃酮和多糖提取方法和條件的最佳優(yōu)化組合。并應(yīng)用乙醇回流法和苯酚-硫酸法探討了葉齡、器官、產(chǎn)地、采收期、管理水平、朝向等與有效成分含量的關(guān)系。研究結(jié)果如下:辣木總黃酮的最佳提取條件為:用70%的乙醇作為提取溶劑,乙醇用量為20倍,提取溫度為80℃,提取3次,每次90min。在此提取條件下,辣木葉總黃酮量為6.59%。辣木多糖的最佳提取條件為:以15倍的溶劑用量,在90℃水浴條件下,提取3次,每次120min,在此提取條件下,辣木葉多糖量為25.51%。辣木葉片總黃酮和多糖含量均以45d的壯齡葉含量最高,總黃酮含量可達(dá)6.11%,多糖含量可達(dá)21.97%;幼齡葉和老齡葉中的總黃酮和多糖含量都比較少。辣木不同器官的總黃酮含量為花柄中最多,根中最少,其變化范圍為0.53%～4.47%;不同器官的多糖含量為根中最多,葉柄中最少,其變化范圍為8.16%～33.61%。不同產(chǎn)地的辣木有效成分含量為:總黃酮含量均在西郊賽車廠種植的含量最高,分別為葉6.78%、葉柄3.43%、莖2.66%;多糖含量均在新豐縣種植的含量最高,分別為葉27.14%、葉柄16.19%、莖12.28%,韶關(guān)學(xué)院生態(tài)園種植的辣木總黃酮和多糖含量均為最低。不同采收期的辣木有效成分含量均在11月采收時含量最高,其中總黃酮含量為葉5.69%、葉柄3.13%、莖2.01%;多糖含量為葉28.85%、葉柄9.71%、莖12.24%。不同管理水平的辣木有效成分含量為:葉在中等管理水平下有效成分含量最高,葉柄和莖中有效成分含量依次為低>中>高。不同朝向的辣木有效成分含量為各器官在向陽和背陽區(qū)之間均沒有顯著性差異。
二、白參菌多糖的提取及含量測定（論文開題報告）
（1）論文研究背景及目的
此處內(nèi)容要求：
首先簡單簡介論文所研究問題的基本概念和背景，再而簡單明了地指出論文所要研究解決的具體問題，并提出你的論文準(zhǔn)備的觀點或解決方法。
寫法范例：
本文主要提出一款精簡64位RISC處理器存儲管理單元結(jié)構(gòu)并詳細(xì)分析其設(shè)計過程。在該MMU結(jié)構(gòu)中,TLB采用叁個分離的TLB,TLB采用基于內(nèi)容查找的相聯(lián)存儲器并行查找,支持粗粒度為64KB和細(xì)粒度為4KB兩種頁面大小,采用多級分層頁表結(jié)構(gòu)映射地址空間,并詳細(xì)論述了四級頁表轉(zhuǎn)換過程,TLB結(jié)構(gòu)組織等。該MMU結(jié)構(gòu)將作為該處理器存儲系統(tǒng)實現(xiàn)的一個重要組成部分。
（2）本文研究方法
調(diào)查法：該方法是有目的、有系統(tǒng)的搜集有關(guān)研究對象的具體信息。
觀察法：用自己的感官和輔助工具直接觀察研究對象從而得到有關(guān)信息。
實驗法：通過主支變革、控制研究對象來發(fā)現(xiàn)與確認(rèn)事物間的因果關(guān)系。
文獻(xiàn)研究法：通過調(diào)查文獻(xiàn)來獲得資料，從而全面的、正確的了解掌握研究方法。
實證研究法：依據(jù)現(xiàn)有的科學(xué)理論和實踐的需要提出設(shè)計。
定性分析法：對研究對象進(jìn)行“質(zhì)”的方面的研究，這個方法需要計算的數(shù)據(jù)較少。
定量分析法：通過具體的數(shù)字，使人們對研究對象的認(rèn)識進(jìn)一步精確化。
跨學(xué)科研究法：運(yùn)用多學(xué)科的理論、方法和成果從整體上對某一課題進(jìn)行研究。
功能分析法：這是社會科學(xué)用來分析社會現(xiàn)象的一種方法，從某一功能出發(fā)研究多個方面的影響。
模擬法：通過創(chuàng)設(shè)一個與原型相似的模型來間接研究原型某種特性的一種形容方法。
三、白參菌多糖的提取及含量測定（論文提綱范文）
（1）食用菌粗多糖測定中粗多糖提取方法的優(yōu)化研究（論文提綱范文）
| 1 材料與方法 |
| 1.1 材料與試劑 |
| 1.2 儀器與設(shè)備 |
| 1.3 試驗方法 |
| 1.3.1 熱水浸提-醇沉淀法提取食用菌粗多糖 |
| 1.3.2 葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 |
| 1.3.3 食用菌粗多糖含量測定 |
| 1.4 統(tǒng)計分析 |
| 2 結(jié)果 |
| 2.1 熱水浸提-醇沉淀法的優(yōu)化 |
| 2.1.1 超聲提取時長對提取效果的影響 |
| 2.1.2 沸水浴加熱時長對提取效率的影響 |
| 2.1.3 醇沉濃度對提取效果的影響 |
| 2.2 優(yōu)化后的食用菌粗多糖提取方法熱水浸提-醇沉淀法的方法學(xué)考察結(jié)果 |
| 2.3 優(yōu)化后提取技術(shù)的應(yīng)用 |
| 3 討論 |
（2）猴頭菌多糖的硫酸化修飾及生物活性研究（論文提綱范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 縮略詞表 |
| 第1章 緒論 |
| 1.1 猴頭菌多糖的研究現(xiàn)狀 |
| 1.1.1 猴頭菌多糖的提取方法 |
| 1.1.2 猴頭菌多糖的生物活性 |
| 1.2 硫酸化多糖的研究現(xiàn)狀 |
| 1.2.1 多糖硫酸化的修飾方法 |
| 1.2.2 硫酸化多糖中硫酸基團(tuán)含量的測定方法 |
| 1.2.3 硫酸化多糖的生物活性 |
| 1.3 本研究目的及意義 |
| 第2章 材料與方法 |
| 2.1 試驗材料 |
| 2.1.1 試驗樣品 |
| 2.1.2 試驗細(xì)胞 |
| 2.1.3 試驗試劑 |
| 2.1.4 試驗儀器 |
| 2.2 試驗方法 |
| 2.2.1 猴頭菌多糖的提取 |
| 2.2.2 猴頭菌硫酸化多糖的制備 |
| 2.2.3 響應(yīng)面法條件優(yōu)化 |
| 2.2.4 猴頭菌硫酸化多糖的純化 |
| 2.2.5 硫酸根取代度(DS)測定 |
| 2.2.6 猴頭菌硫酸化多糖組分分析 |
| 2.2.7 FT-IR檢測 |
| 2.2.8 毛細(xì)管電泳檢測 |
| 2.2.9 CCK-8試驗 |
| 2.2.10 細(xì)胞毒性試驗 |
| 2.2.11 細(xì)胞形態(tài)學(xué)檢測 |
| 2.2.12 Caspase酶活性試驗 |
| 2.2.13 細(xì)胞劃痕試驗 |
| 2.2.14 中性紅試驗 |
| 2.2.15 格里斯試驗 |
| 2.2.16 酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)試驗 |
| 2.2.17 清除自由基試驗 |
| 2.2.18 總抗氧化能力試驗 |
| 2.2.19 統(tǒng)計學(xué)分析 |
| 第3章 試驗結(jié)果 |
| 3.1 猴頭菌多糖硫酸化最佳修飾工藝及純化 |
| 3.1.1 猴頭菌多糖硫酸化修飾單因素試驗 |
| 3.1.2 響應(yīng)面法確定猴頭菌多糖硫酸化最佳修飾工藝 |
| 3.1.3 猴頭菌硫酸化多糖的純化 |
| 3.2 S-HEP組成成分分析 |
| 3.2.1 總糖含量 |
| 3.2.2 蛋白含量 |
| 3.2.3 糖醛酸含量 |
| 3.3 S-HEP結(jié)構(gòu)鑒定 |
| 3.3.1 FT-IR檢測 |
| 3.3.2 單糖組分分析 |
| 3.4 S-HEP的抗腫瘤活性 |
| 3.4.1 S-HEP對 SGC-7901 細(xì)胞增殖的影響 |
| 3.4.2 S-HEP細(xì)胞毒性檢測 |
| 3.4.3 S-HEP對 SGC-7901 細(xì)胞凋亡的影響 |
| 3.4.4 S-HEP對 SGC-7901 細(xì)胞遷移的影響 |
| 3.5 S-HEP的免疫調(diào)節(jié)活性 |
| 3.5.1 S-HEP對 RAW264.7 細(xì)胞增殖的影響 |
| 3.5.2 S-HEP對 RAW264.7 細(xì)胞吞噬作用的影響 |
| 3.5.3 S-HEP對 RAW264.7 細(xì)胞炎癥介質(zhì)的影響 |
| 3.6 S-HEP的抗氧化活性 |
| 3.6.1 S-HEP清除自由基的能力 |
| 3.6.2 S-HEP總抗氧化的能力 |
| 第4章 討論 |
| 4.1 猴頭菌硫酸化多糖的制備優(yōu)化 |
| 4.2 猴頭菌硫酸化多糖的純化 |
| 4.3 猴頭菌硫酸化多糖的結(jié)構(gòu)鑒定 |
| 4.4 猴頭菌硫酸化多糖的抗腫瘤活性 |
| 4.5 猴頭菌硫酸化多糖的免疫調(diào)節(jié)活性 |
| 4.6 猴頭菌硫酸化多糖的抗氧化活性 |
| 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
| 攻讀學(xué)位期間發(fā)表論文 |
（3）油茶桑寄生多糖提取工藝優(yōu)化及體外抗凝抗氧化活性研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 引言 |
| 1.1 多糖的概述 |
| 1.1.1 多糖的提取技術(shù)和提取實驗的優(yōu)化方法 |
| 1.1.2 多糖的含量和結(jié)構(gòu)測定 |
| 1.1.3 多糖的生物學(xué)活性研究 |
| 1.2 桑寄生的概述 |
| 1.2.1 桑寄生的來源和種類 |
| 1.2.2 桑寄生的研究發(fā)展 |
| 1.2.3 桑寄生的臨床應(yīng)用 |
| 1.2.4 桑寄生多糖的生物活性 |
| 1.3 油茶桑寄生的研究進(jìn)展 |
| 1.4 研究的目的、意義及主要內(nèi)容 |
| 1.4.1 研究的目的意義 |
| 1.4.2 研究的主要內(nèi)容 |
| 第2章 水提油茶桑寄生多糖工藝研究 |
| 2.1 材料與方法 |
| 2.1.1 原料 |
| 2.1.2 試劑 |
| 2.1.3 儀器 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 原料預(yù)處理 |
| 2.2.2 油茶桑寄生的多糖提取 |
| 2.2.3 單因素實驗 |
| 2.2.4 正交實驗 |
| 2.3 結(jié)果與討論 |
| 2.3.1 油茶桑寄生多糖的單因素實驗結(jié)果 |
| 2.3.2 水提油茶桑寄生多糖正交實驗結(jié)果 |
| 2.4 小結(jié) |
| 第3章 油茶桑寄生多糖的提取及其結(jié)構(gòu)研究 |
| 3.1 材料與方法 |
| 3.1.1 原料 |
| 3.1.2 主要試劑 |
| 3.1.3 主要儀器 |
| 3.2 實驗方法 |
| 3.2.1 油茶桑寄生多糖的提取 |
| 3.2.2 油茶桑寄生多糖的總糖含量測定 |
| 3.2.3 油茶桑寄生多糖的糖醛酸含量測定 |
| 3.2.4 油茶桑寄生多糖的蛋白質(zhì)含量測定 |
| 3.2.5 油茶桑寄生多糖的紅外測定 |
| 3.2.6 油茶桑寄生多糖的平均分子量測定 |
| 3.2.7 油茶桑寄生多糖的單糖組成測定 |
| 3.2.8 統(tǒng)計分析方法 |
| 3.3 結(jié)果與討論 |
| 3.3.1 油茶桑寄生多糖的總糖含量測定結(jié)果 |
| 3.3.2 油茶桑寄生多糖的糖醛酸含量測定結(jié)果 |
| 3.3.3 油茶桑寄生多糖的蛋白質(zhì)含量測定結(jié)果 |
| 3.3.4 油茶桑寄生多糖的紅外光譜結(jié)果測定結(jié)果 |
| 3.3.5 油茶桑寄生多糖的平均分子量及其分布結(jié)果 |
| 3.3.6 油茶桑寄生多糖的單糖組成測定結(jié)果 |
| 3.4 小結(jié) |
| 第4章 油茶桑寄生多糖的抗凝血活性研究 |
| 4.1 實驗材料 |
| 4.1.1 主要試劑 |
| 4.1.2 主要儀器 |
| 4.1.3 實驗動物 |
| 4.2 實驗方法 |
| 4.2.1 血漿制備 |
| 4.2.2 油茶桑寄生多糖抗凝血實驗 |
| 4.2.3 統(tǒng)計分析方法 |
| 4.3 結(jié)果與討論 |
| 4.3.1 肝素溶液的測定結(jié)果 |
| 4.3.2 油茶桑寄生多糖的APTT測定結(jié)果 |
| 4.3.3 油茶桑寄生多糖的TT測定結(jié)果 |
| 4.3.4 油茶桑寄生多糖的PT測定結(jié)果 |
| 4.4 小結(jié) |
| 第5章 油茶桑寄生多糖抗氧化作用研究 |
| 5.1 實驗材料 |
| 5.1.1 主要試劑 |
| 5.1.2 主要儀器 |
| 5.2 實驗方法 |
| 5.2.1 ABTS法 |
| 5.2.2 DPPH法 |
| 5.2.3 細(xì)胞抗氧化法(CAA) |
| 5.2.4 統(tǒng)計分析方法 |
| 5.3 結(jié)果與討論 |
| 5.3.1 ABTS法測定油茶桑寄生多糖的抗氧化活性的結(jié)果 |
| 5.3.2 DPPH法測定油茶桑寄生多糖的抗氧化活性的結(jié)果 |
| 5.3.3 CAA法測定油茶桑寄生多糖的抗氧化活性的結(jié)果 |
| 5.4 小結(jié) |
| 第6章 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
| 附錄 英文縮略詞表 |
| 個人簡歷 |
| 攻讀碩士學(xué)位期間發(fā)表論文情況 |
（4）簡鞘蛇菰及其寄主植株多糖成分的提取與優(yōu)化（論文提綱范文）
| 1 材料和方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 儀器 |
| 1.3 實驗方法 |
| 1.3.1 6%苯酚溶液的配置 |
| 1.3.2 制備葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 1.3.3 提取工藝流程 |
| 1.3.4 提取步驟 |
| 1.3.5 提取液中多糖的測定 |
| 1.3.6 計算多糖提取率 |
| 2 結(jié)果與分析 |
| 2.1 材料的采集 |
| 2.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 2.3 多糖含量的測定 |
| 2.4 實驗分析 |
| 3 結(jié)論 |
（5）蓽茇多糖提取與含量測定（論文提綱范文）
| 1 實驗材料 |
| 1.1 實驗藥物 |
| 1.2 實驗試劑 |
| 1.3 實驗儀器 |
| 2 實驗方法 |
| 2.1 蓽茇多糖提取 |
| 2.2 蓽茇多糖含量測定 |
| ①葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液的配置: |
| ②5%苯酚溶液的配置: |
| ③標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制: |
| ④樣品溶液的配制: |
| ⑤重現(xiàn)性實驗: |
| ⑥精密度試驗: |
| ⑦回收率實驗: |
| ⑧蓽茇多糖含量測定: |
| 3 討論 |
（6）牛蒡多糖的提取純化及其抗氧化性研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 緒論 |
| 1.1. 概述 |
| 1.2. 牛蒡多糖研究進(jìn)展 |
| 1.2.1 牛蒡營養(yǎng)價值 |
| 1.2.2 牛蒡藥用價值 |
| 1.2.3 牛蒡特殊功效 |
| 1.2.4 牛蒡開發(fā)現(xiàn)狀 |
| 1.2.5 牛蒡多糖研究概況 |
| 1.3 論文立題依據(jù) |
| 1.3.1 論文研究意義 |
| 1.3.2 論文主要研究內(nèi)容 |
| 第二章 牛蒡多糖的提取工藝研究 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 實驗原料 |
| 2.1.2 主要儀器 |
| 2.1.3 主要試劑 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 多糖含量測定 |
| 2.2.2 原料的預(yù)處理 |
| 2.2.3 多糖樣品含量測定方法 |
| 2.2.4 熱水浸提牛蒡多糖工藝 |
| 2.2.5 微波輔助浸提牛蒡多糖工藝 |
| 2.2.6 超聲波輔助浸提牛蒡多糖工藝 |
| 2.3 實驗結(jié)果分析 |
| 2.3.1 熱水浸提工藝研究 |
| 2.3.2 微波輔助浸提工藝研究 |
| 2.3.3 超聲波輔助浸提工藝研究 |
| 2.4 本章小結(jié) |
| 第三章 牛蒡多糖的分離純化工藝研究 |
| 3.1 實驗材料 |
| 3.1.1 實驗原料 |
| 3.1.2 主要儀器 |
| 3.1.3 主要試劑 |
| 3.2 實驗方法 |
| 3.2.1 蛋白質(zhì)含量的測定 |
| 3.2.2 多糖的測定 |
| 3.2.3 工藝流程 |
| 3.2.4 蛋白質(zhì)的去除 |
| 3.2.5 小分子物質(zhì)的去除 |
| 3.2.6 脫色 |
| 3.2.7 SephadexG-75柱層析 |
| 3.2.8 純度檢測 |
| 3.2.9 牛蒡多糖理化性質(zhì)測定 |
| 3.3 實驗結(jié)果分析 |
| 3.3.1 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.3.2 蛋白質(zhì)脫除工藝研究 |
| 3.3.3 SephadexG-75洗脫曲線 |
| 3.3.4 牛蒡多糖的純度鑒定 |
| 3.3.5 牛蒡多糖的理化性質(zhì) |
| 3.4 本章小結(jié) |
| 第四章 牛蒡多糖的成分及結(jié)構(gòu)分析 |
| 4.1 實驗材料 |
| 4.1.1 實驗原料 |
| 4.1.2 主要儀器 |
| 4.1.3 主要試劑 |
| 4.2 實驗方法 |
| 4.2.1 牛蒡多糖的提取,分離和純化工藝流程圖 |
| 4.2.2 牛蒡純化多糖的組成分析 |
| 4.2.3 牛蒡純化多糖的糖苷鍵鍵型 |
| 4.3 實驗結(jié)果分析 |
| 4.3.1 牛蒡純化多糖的單糖組分 |
| 4.3.2 牛蒡純化多糖的~1HNMR圖譜 |
| 4.3.3 牛蒡純化多糖的糖苷鍵鍵型 |
| 4.4 本章小結(jié) |
| 第五章 牛蒡多糖的抗氧化性研究 |
| 5.1 實驗材料 |
| 5.1.1 實驗原料 |
| 5.1.2 主要儀器 |
| 5.1.3 主要試劑 |
| 5.2 實驗方法 |
| 5.2.1 DPPH·自由基清除方法 |
| 5.2.2 抗脂質(zhì)過氧化能力POV值測定方法 |
| 5.2.3 OH·清除方法 |
| 5.2.4 O_2·清除方法 |
| 5.2.5 還原力測定方法 |
| 5.3 實驗結(jié)果分析 |
| 5.3.1 牛蒡粗多糖的抗氧化性 |
| 5.3.2 牛蒡脫蛋白多糖的抗氧化性 |
| 5.3.3 牛蒡純化多糖的抗氧化性 |
| 5.4 本章小結(jié) |
| 總結(jié) |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
| 攻瀆碩士期間發(fā)表的論文 |
（8）密花石斛多糖的提取分離及其初步生物活性研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 前言 |
| 第二章 材料和方法 |
| 1.主要儀器 |
| 2.動物與瘤株 |
| 3.藥品與試劑 |
| 4.實驗方法 |
| 第三章 結(jié)果 |
| 1.密花石斛提取物中多糖的含量 |
| 2.正交試驗數(shù)據(jù)分析 |
| 3.密花石斛粗多糖的分離(DEAE-52纖維素柱層析) |
| 4.密花石斛酸性多糖的相對分子質(zhì)量測定(Sephadex G-100柱層析) |
| 5.密花石斛酸性多糖對脾細(xì)胞增殖的影響 |
| 6.密花石斛酸性多糖對人肺癌A549、肝癌G2細(xì)胞生長抑制的影響 |
| 第四章 討論 |
| 1.密花石斛多糖提取正交試驗及含量測定 |
| 2.密花石斛粗多糖的分離 |
| 3.密花石斛酸性多糖的初步生物活性實驗 |
| 4.密花石斛酸性多糖的酸性強(qiáng)弱與生物學(xué)活性的關(guān)系 |
| 5.密花石斛酸性多糖的相對分子質(zhì)量與生物學(xué)活性 |
| 第五章 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 附錄 中英文縮略詞對照表 |
| 攻讀學(xué)位期間成果 |
| 致謝 |
| 統(tǒng)計學(xué)證明 |
（9）酸提香菇多糖的提取分離、結(jié)構(gòu)鑒定及抗氧化活性研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 緒論 |
| 1 香菇簡介 |
| 2 香菇多糖的提取、分離和純化 |
| 2.1 提取 |
| 2.2 分離 |
| 2.3 純化 |
| 2.4 純度鑒定 |
| 3 香菇多糖的分析測定方法 |
| 3.1 香菇多糖的理化性質(zhì) |
| 3.2 香菇多糖含量的測定 |
| 3.3 香菇多糖分子量的測定 |
| 3.4 香菇多糖的分子結(jié)構(gòu) |
| 3.5 香菇多糖的結(jié)構(gòu)分析 |
| 4 香菇多糖的生物活性及其機(jī)理 |
| 4.1 抗腫瘤 |
| 4.2 抗病毒 |
| 4.3 免疫調(diào)節(jié) |
| 4.4 其它藥理作用 |
| 4.5 香菇多糖的構(gòu)效關(guān)系 |
| 5 課題構(gòu)想 |
| 5.1 本課題研究目的意義 |
| 5.2 研究的主要內(nèi)容 |
| 第二章 香菇多糖的HCl提取研究 |
| 1 引言 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 原料 |
| 2.1.2 主要試劑 |
| 2.1.3 主要儀器 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 香菇中多糖的HCl提取流程 |
| 2.2.2 香菇的前處理 |
| 2.2.3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作 |
| 2.2.4 多糖含量的計算 |
| 2.2.5 HCl提取單因素實驗 |
| 2.2.6 正交試驗 |
| 2.2.7 數(shù)據(jù)處理 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.2 HCl提取單因素實驗 |
| 3.2.1 提取時間對香菇多糖提取率的影響 |
| 3.2.2 提取溫度對香菇多糖提取率的影響 |
| 3.2.3 料液比對香菇多糖提取率的影響 |
| 3.2.4 酸的濃度對香菇多糖提取率的影響 |
| 3.2.5 加醇比對香菇多糖提取率的影響 |
| 3.3 酸提香菇多糖提取率數(shù)學(xué)模型的建立 |
| 3.3.1 回歸數(shù)學(xué)模型解析 |
| 3.3.2 提取率模型優(yōu)化 |
| 4 結(jié)論 |
| 第三章 香菇多糖提取、分離和純化方法的研究 |
| 1 引言 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 主要試劑 |
| 2.1.2 主要儀器 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 香菇多糖的提取、分離、純化工藝流程 |
| 2.2.2 香菇多糖的純度鑒定 |
| 2.2.3 糖含量及相關(guān)成分的測定 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.3 葡萄糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線 |
| 3.4 香菇多糖的提取 |
| 3.5 香菇多糖的分離、純化 |
| 3.5.1 脫蛋白 |
| 3.5.2 乙醇梯度分級 |
| 3.6 級分多糖的純度鑒定 |
| 3.6.1 凍融離心 |
| 3.6.2 常壓凝膠柱層析 |
| 3.7 中性糖、糖醛酸及蛋白質(zhì)的含量 |
| 4 結(jié)論 |
| 第四章 酸提香菇多糖結(jié)構(gòu)初級鑒定 |
| 1 引言 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 主要試劑 |
| 2.1.2 主要儀器 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 紫外-可見光分析 |
| 2.2.2 紅外光譜分析 |
| 2.2.3 分子量的測定 |
| 2.2.4 氨基酸組成分析 |
| 2.2.5 級分多糖的單糖組成分析 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 紫外-可見光譜分析 |
| 3.2 紅外光譜分析 |
| 3.3 分子量的測定 |
| 3.4 香菇多糖SP_2氨基酸組成分析 |
| 3.5 香菇多糖SP_2單糖組成分析 |
| 4 結(jié)論 |
| 第五章 香菇多糖的抗氧化活性研究 |
| 1 引言 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 實驗樣品 |
| 2.1.2 實驗動物 |
| 2.1.3 主要試劑 |
| 2.1.4 主要儀器 |
| 2.2 實驗方法 |
| 2.2.1 清除超氧陰離子 |
| 2.2.2 清除羥基自由基 |
| 2.2.3 清除過氧化氫 |
| 2.2.5 還原能力測定 |
| 2.2.6 對小鼠肝勻漿體外生成MDA的影響 |
| 2.2.7 小鼠肝線粒體腫脹度的測定 |
| 2.2.8 H_2O_2誘導(dǎo)小鼠紅細(xì)胞氧化溶血的影響 |
| 2.2.9 統(tǒng)計學(xué)分析 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 清除超氧陰離子測定 |
| 3.2 清除羥基自由基測定 |
| 3.3 清除過氧化氫測定 |
| 3.4 還原能力測定 |
| 3.5 對小鼠肝勻漿MDA生成的影響 |
| 3.6 對小鼠肝線粒體腫脹度的影響 |
| 3.7 對H_2O_2誘導(dǎo)小鼠紅細(xì)胞氧化溶血的影響 |
| 4 結(jié)論 |
| 第六章 結(jié)論 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 致謝 |
| 附錄 |
（10）辣木黃酮和多糖提取方法及其含量影響因素的初步研究（論文提綱范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 引言 |
| 1.1 辣木的概況 |
| 1.1.1 辣木資源的分布 |
| 1.1.2 辣木的生態(tài)學(xué)特征 |
| 1.1.3 辣木的營養(yǎng)成分 |
| 1.1.4 辣木的開發(fā)利用途徑 |
| 1.1.5 辣木的藥用價值 |
| 1.2 辣木有效成分研究現(xiàn)狀 |
| 1.2.1 辣木黃酮研究現(xiàn)狀 |
| 1.2.2 辣木多糖研究現(xiàn)狀 |
| 1.3 本研究的目的和意義 |
| 2 材料與方法 |
| 2.1 實驗材料 |
| 2.1.1 材料種植與處理 |
| 2.1.2 試驗設(shè)計與取樣 |
| 2.2 實驗藥品與主要儀器設(shè)備 |
| 2.3 實驗方法 |
| 2.3.1 辣木總黃酮的提取及含量測定 |
| 2.3.2 辣木多糖的提取及含量測定 |
| 3 結(jié)果與分析 |
| 3.1 辣木總黃酮影響因素的試驗與分析 |
| 3.1.1 提取方法與提取條件對辣木葉總黃酮量的影響 |
| 3.1.2 生長發(fā)育對辣木總黃酮含量的影響 |
| 3.1.3 生長環(huán)境對辣木總黃酮含量的影響 |
| 3.2 辣木多糖影響因素的試驗與分析 |
| 3.2.1 提取方法與提取條件對辣木多糖量的影響 |
| 3.2.2 生長發(fā)育對辣木多糖含量的影響 |
| 3.2.3 生長環(huán)境對辣木多糖含量的影響 |
| 4 討論 |
| 4.1 關(guān)于辣木總黃酮提取方法及含量的測定 |
| 4.2 關(guān)于辣木多糖提取方法及含量的測定 |
| 4.3 關(guān)于辣木總黃酮含量的影響因素 |
| 4.4 關(guān)于辣木多糖含量的影響因素 |
| 5 結(jié)論 |
| 致謝 |
| 參考文獻(xiàn) |
| 作者簡介 |
四、白參菌多糖的提取及含量測定（論文參考文獻(xiàn)）
- [1]食用菌粗多糖測定中粗多糖提取方法的優(yōu)化研究[J]. 秦忠雪,唐嘉陽,阮佳. 預(yù)防醫(yī)學(xué)情報雜志, 2021(02)
- [2]猴頭菌多糖的硫酸化修飾及生物活性研究[D]. 周艷. 黑龍江大學(xué), 2020(04)
- [3]油茶桑寄生多糖提取工藝優(yōu)化及體外抗凝抗氧化活性研究[D]. 梁琴. 湘潭大學(xué), 2018(02)
- [4]簡鞘蛇菰及其寄主植株多糖成分的提取與優(yōu)化[J]. 姚茜,侯娟,祝迪凡,袁紅,吳聽潮,楊宙. 廣州化工, 2017(08)
- [5]蓽茇多糖提取與含量測定[J]. 烏云塔娜,齊明玉,劉敏. 中國民族民間醫(yī)藥, 2013(01)
- [6]牛蒡多糖的提取純化及其抗氧化性研究[D]. 胡建. 揚(yáng)州大學(xué), 2011(04)
- [7]蛇菰多糖的提取及測定[J]. 楊黎江,路金榮,王曉娟,沈放. 昆明學(xué)院學(xué)報, 2010(03)
- [8]密花石斛多糖的提取分離及其初步生物活性研究[D]. 李雯. 南方醫(yī)科大學(xué), 2010(04)
- [9]酸提香菇多糖的提取分離、結(jié)構(gòu)鑒定及抗氧化活性研究[D]. 郝強(qiáng). 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2008(02)
- [10]辣木黃酮和多糖提取方法及其含量影響因素的初步研究[D]. 孫鳴燕. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2008(11)
標(biāo)簽：香菇多糖論文; 大力子論文; 石斛論文; 多糖論文; 相對分子質(zhì)量論文;